පොස්පේට් බෆර විසඳුම. පොස්පේට් බෆර ද්රාවණය සකස් කිරීම. සමහර ප්රතික්රියාකාරක සකස් කිරීම

    රක්තපාත අධ්‍යයනය සඳහා ජීව විද්‍යාත්මක ද්‍රව්‍ය එකතු කිරීම සහ සකස් කිරීම සඳහා අවශ්‍යතා.

    රක්තපාත අධ්‍යයනය සඳහා ජීව විද්‍යාත්මක ද්‍රව්‍ය ප්‍රවාහනය සහ ගබඩා කිරීම සඳහා අවශ්‍යතා.

Hemostasis පද්ධතිය අධ්යයනය කිරීම සඳහා දිශාව නිවැරදිව පිරවීම:

    රෝගියාගේ සම්පූර්ණ නම, වයස, ලිංගභේදය

    පර්යේෂණ සඳහා රුධිර සාම්පල ලබා ගැනීමේ කාලය

    සායනික රෝග විනිශ්චය (කෙටියෙන්)

    Hematocrit

    රක්තපාත සින්ඩ්‍රෝමය (නාසික, ගර්භාෂ ලේ ගැලීම, ආදිය), thrombosis (දේශීයකරණය පෙන්නුම් කරයි), කම්පනය, බහු අවයව අසමත්වීම, කම්පනය, දිගු සම්පීඩන සින්ඩ්‍රෝමය, පිළිස්සුම් ආදිය.

    අවසාන පරිපාලනයේ මාත්‍රාව, ක්‍රමය සහ දිනය සඳහන් කරමින් hemostasis හි පරාමිතීන්ට බලපාන ඖෂධ සඳහන් කරන්න.

    නියැදීම් (රුධිරය), ආහාර සහ ව්‍යායාම සීමා කිරීම් සඳහා කාල පරතරය නිරීක්ෂණය කරනු ලැබේ:

    කාලසටහන්ගත රුධිර සාම්පල උදෑසන 7 සිට 9 දක්වා සිදු කරනු ලැබේ, රෝගියා බොරු හෝ වාඩි වී සිටී. ගතිකත්වයේ hemostasis අධ්යයනය කරන විට, පෙර පැවති ආකාරයටම ශරීරයේ එම ස්ථානයේම රුධිරය ගැනීම යෝග්ය වේ.

    අවසාන ආහාර වේලෙන් පැය 12-14 කට පසුව හිස් බඩක් මත රුධිරය ගනු ලැබේ.

    රුධිරය ගැනීමට පෙර, රෝගියා විනාඩි 15 ක් විවේක ගැනීම යෝග්ය වේ.

    ව්යතිරේක: cito විසින් hemostasis අධ්යයනය, APTT තක්සේරු කිරීම.

    සැලසුම්ගත අධ්‍යයනයක් ආසන්නයේ (පැය 24 ක් ඇතුළත), රෝගියා සැලකිය යුතු ශාරීරික වෙහෙසකින්, මත්පැන් පානය කිරීමෙන් වැළකී සිටී. රුධිර සාම්පල ලබා ගැනීමට පෙර රෝගියා මේද ආහාර අනුභව නොකිරීම යෝග්‍ය වේ.

ශල්‍යකර්ම මැදිහත්වීම දින කිහිපයක් සිට සති කිහිපයක් දක්වා රක්තපාතයේ වෙනසක් ඇති කරයි.

ඊ hemostasis බලපාන සාධක එන්නත්, මුදල් සම්භාරයක් වියදම්, රුධිර පාරවිලයනය, සිදුරු, biopsies, සම්බාහන, dialysis, radiopaque නියෝජිතයන් හඳුන්වාදීම, immunoscintiography, අයනීකරණ විකිරණ, එන්ඩොස්කොපික් පරීක්ෂණ, විශේෂ ආහාර වේලට ඇතුළත් වේ.

රුධිර සාම්පල සඳහා නීති

    පර්යන්ත නහරයකින් (සාමාන්‍යයෙන් cubital) රුධිරය ගනු ලැබේ.

    රුධිර නියැදීම සිදු කරනු ලබන්නේ භාවිතා කරන ප්‍රතිදේහජනකය මත පදනම්ව විශේෂ වර්ණ සලකුණු සහිත පරීක්ෂණ නලවල රික්ත නියැදි පද්ධතියක් භාවිතයෙන් පමණි ( සෝඩියම් සයිටේ්රට් 3.2%)අනුපාතය: සෝඩියම් සයිටේ්රට් 1 වෙළුම රුධිර පරිමාව 9 දක්වා.

    පර්යේෂණ සඳහා පට්ටිකා මට්ටම්පරීක්ෂණ නළයක රුධිරය ගැනීම EDTA සමඟ(ලිලැක් වර්ණ කේතීකරණය). පට්ටිකා මට්ටම අධ්‍යයනය කිරීම සායනික රුධිර පරීක්ෂණයක් නොමැති විට හෝ සායනික රුධිර පරීක්ෂණයකින් පට්ටිකා මට්ටමේ ව්යාධිජනක අගයන් ලබා ගන්නා විට නියම කරනු ලැබේ.

    තත්පර 60 ට නොඅඩු කෙටි තරඟාවලියකට අවසර ඇත. ඉඳිකටුවක් නහරයට ඇතුළු වූ වහාම ටුවර්නිකට් ඉවත් කරන්න. කැටි ගැසීමේ පද්ධතිය අධ්‍යයනය කිරීම සඳහා රුධිර සාම්පල ලබා ගැනීම සඳහා, ඔබට නහර සම්බාහනය කළ නොහැකි වීම, ඒවාට තට්ටු කිරීම වැදගත් වේ.

    අභ්යන්තර විෂ්කම්භය 0.7-1 mm (ප්රමාණය 19-22) සහිත රුධිර එකතු කිරීමේ ඉඳිකටුවක් භාවිතා කරන්න.

    රුධිරයේ කැළඹිලි සහිත චලනය සහ වාතය සමඟ මිශ්‍ර වීම (පෙණ නැගීම) මගින් පට්ටිකා සහ රුධිර කැටි ගැසීමේ සාධක සක්‍රීය කිරීම හේතුවෙන් සිරින්ජයක් භාවිතා කිරීම පිළිගත නොහැකිය. රික්තක බහාලුම් භාවිතා කරන විට එය බැහැර කරනු ලැබේ.

    ඉඳිකටුවක් නහරයට ඇතුළු කිරීමෙන් පසු, රික්ත කන්ටේනරය අමුණන්න, ගුරුත්වාකර්ෂණය මගින් රුධිරය කන්ටේනරය තුළට ගලා යාමට පටන් ගනී.

    කැටි ගැසීමේ පරීක්ෂණය සඳහා රුධිරය ගන්න දෙවැනිපරීක්ෂණ නළය, වෙනත් අධ්‍යයන සඳහා පළමු භාවිතය, උදාහරණයක් ලෙස, ජෛව රසායනික. කැටි ගැසීමේ පරීක්ෂණ නළය ප්‍රථමයෙන් ඇද ගැනීමට අවශ්‍ය නම්, පළමු රුධිර මිලි ලීටර් 5 හිස් නලයකට ඇද ඉවත් කරන්න. පටක thromboplastin සාම්පලයට ඇතුල් වීම වැළැක්වීම.

    ප්‍රතිදේහජනකය (නල 3-4 වතාවක් පෙරළන්න) පෙණ නොගසා එකතු වූ වහාම රුධිරය මෘදු ලෙස මිශ්‍ර කරන්න.

    ජීව විද්‍යාත්මක ද්‍රව්‍ය නියැදීමෙන් පසු රුධිර සාම්පල පරීක්ෂා කරන්න. රුධිර සාම්පල නිවැරදිව පරීක්ෂා කිරීම පහත දෝෂ මඟහරවා ගනී: රුධිර / සයිටේ්රට් පරිමාවේ වැරදි අනුපාතය; අර්ධ වශයෙන් කැටි ගැසුණු රුධිරය.

රුධිරය එකතු කිරීමෙන් පසු විනාඩි 45 ක් ඇතුළත රසායනාගාරයට ලබා දෙනු ලැබේ. ප්රවාහනය අතරතුර, රුධිරය නොසෙල්විය යුතුය. රුධිර සාම්පල 4 ° C ට අඩු සහ 30 ° C ට වැඩි උෂ්ණත්වවලදී ප්රවාහනය නොකළ යුතුය.

පරිපූරක වෛද්‍ය රසායනාගාර සහකාර (වෛද්‍ය තාක්ෂණවේදියෙකු) සිදු කරන්නේ:

    බෙදා හරින ලද රුධිරයේ ආදාන පාලනය, ඇතුළුව: 1) යොමු කිරීමේ පෝරමය පිරවීමේ නිවැරදි බව පරීක්ෂා කිරීම. 2)නලයේ ලේබලය අනුව ලබා දුන් රුධිර පරිමාවේ ප්‍රමාණවත් බව පරීක්ෂා කිරීම, 3) නළය සෙමෙන් ඇල වූ විට කැටි ගැසීම් නොමැති වීම සඳහා නියැදිය පරීක්ෂා කිරීම.

    ලබා ගැනීම සඳහා බෙදා හරින ලද රුධිරය කේන්ද්රාපසාරී කිරීම:

පට්ටිකා බහුල ප්ලාස්මා (කේන්ද්රාපසාරී පරාමිතීන්: rpm = 1000 rpm (150-200g පමණ), කේන්ද්රාපසාරී කාලය විනාඩි 5-7.

ප්රශස්ත කේන්ද්රාපසාරී තත්වයන් තෝරාගැනීම සඳහා, ඒවා කේන්ද්රාපසාරී බලය (g) මගින් මෙහෙයවනු ලැබේ. ඔබට සූත්රය භාවිතා කළ හැකිය:

g = 1.118 x 0.00001r x n2,

මෙහි r යනු කේන්ද්රාපසාරී අරය - භ්රමකයේ අක්ෂය සහ කේන්ද්රාපසාරී ආසනයේ පරීක්ෂණ නලයේ මධ්යය අතර සෙන්ටිමීටරයේ දුර; n යනු විනාඩියකට සිදුවන විප්ලව ගණනයි.

පට්ටිකා-දුප්පත් ප්ලාස්මාකේන්ද්රාපසාරී පරාමිතීන්: rpm = ~ 2500-3000 rpm (1500-2000g පමණ), කේන්ද්රාපසාරී කාලය 10-20 විනාඩි. පට්ටිකා සම්පූර්ණයෙන් ඉවත් කිරීම සඳහා, නැවත නැවතත් කේන්ද්රාපසාරී කිරීම සිදු කරනු ලැබේ, කේන්ද්රාපසාරී පරාමිතීන් එලෙසම පවතී.

3. කේන්ද්රාපසාරී කිරීමෙන් පසුව, වර්ණ හා විනිවිදභාවය සඳහා ප්ලාස්මා පරීක්ෂා කරයි: hemolyzed සාම්පලයක්, icteric හෝ lipemic (chylous) ප්ලාස්මා පරීක්ෂණයට යටත් නොවේ.

    කේන්ද්රාපසාරී කිරීමෙන් පසුව, අධිප්රමාණ ඉවත් කරනු ලැබේ.

කැමතියතුළ hemostasis පරාමිතීන් අධ්යයනය රුධිර සාම්පල ලබා ගැනීමෙන් පැය 2 කට පසුව, නමුත් අවසර තුළ කැටි ගැසීමේ පරාමිතීන් අධ්යයනය කිරීම පැය 4 ක් ඇතුළත ප්ලාස්මා එරිත්රෝසයිට් සහ ලියුකෝසයිට් වල අවසාදිතයෙන් වෙන් කර ඇත්නම්.

අවශ්ය නම් දිගු කාලීන ගබඩා කිරීම"නැවුම්" සාම්පල (රුධිර සාම්පල ලබා ගැනීමෙන් පැය 2 කට පසුව නොවේ) පට්ටිකා රහිත ප්ලාස්මාවරක් විය හැක කැටි කිරීමටසති 2 ක් දක්වා -20 ° C හෝ මාස 6 ක් දක්වා -70 ° C දී ගබඩා කරන්න. ප්ලාස්මා උණුසුම් ජලය (+36 ° C) තුළ ඉක්මනින් දිය වී, තරයේ මිශ්ර කර වහාම පරීක්ෂා කළ යුතුය. කැටි කිරීමෙන් පසු, APTT හි වෙනසක් කළ හැකිය.

    රක්තපාත අධ්‍යයනය සඳහා ක්ෂුද්‍ර සූදානම සකස් කිරීමේ ක්‍රමය, සවි කිරීම් සහ පැල්ලම් කිරීමේ ක්‍රම.

    රක්තපාත අධ්යයන සඳහා රුධිර ආලේපන සකස් කිරීමේ ක්රමය.

වීදුරු සකස් කිරීම සහ සැකසීම. Nikiforov (96% එතිල් මධ්යසාර සහ ඊතර්වල සමාන කොටස්) මිශ්රණයකින් degreasing පසු නව පිරිසිදු වීදුරු භාවිතා කළ හැකිය. පාවිච්චි කරන ලද වීදුරු උණුසුම් සබන් ද්‍රාවණයක හෝ රෙදි සෝදන කුඩු ද්‍රාවණයක (වතුර ලීටර් 5 කට කුඩු 1 tablespoon) දිනකට පොඟවා ඇත. දිනකට පසු, විසඳුම කාන්දු වන අතර, වීදුරුව ගලා යන ජලයෙන් සෝදා ඇත. ඉන්පසු ඒවා නැවත උණුසුම් සබන් ද්‍රාවණයකින් හෝ රෙදි සෝදන කුඩු ද්‍රාවණයකින් වත් කර නභිගත කර විනාඩි 5-10 ක් එකම ද්‍රාවණයක තම්බා (තවත් නැත, වීදුරු වලාකුළු වළක්වා ගැනීම සඳහා). විසඳුම සිසිලනයෙන් පසුව, එය නැවත ජලය බැස යන අතර, ස්ලයිඩ ගලා යන ජලයෙන් සෝදා හරින අතර, සෑම විනිවිදකයක්ම ගලා යන ජලය යටතේ බුරුසුවකින් සෝදා ඇත. මේ ආකාරයෙන් ප්රතිකාර කරන ලද වීදුරු වියළීම සඳහා පිරිසිදු පත්රයක් මත තබා ඇත. Degreasing සඳහා පිරිසිදු වීදුරු Nikiforov හෝ 96% එතිල් මධ්යසාර මිශ්රණයක් විනාඩි 60 ක් තබා, පසුව වියළි පිස දමා පුළුල් බෙල්ලක් සහිත පිරිසිදු භාජනයක ගබඩා කර ඇත. පිරිසිදු කණ්නාඩි කරකැවිල්ලෙන් හෝ අත්වලින් පැති දාරවලින් ගැනීම නිර්දේශ කෙරේ.

ස්මෑම් සකස් කිරීම. කුඩා රුධිර බිංදුවක් වීදුරු පොල්ලකින් (හෝ ඇඟිලි ගැසූ ස්ථානයෙන් කෙලින්ම) කෙටි පැත්තට ආසන්නව වියළි සකස් කළ වීදුරු ස්ලයිඩයකට යොදනු ලැබේ. වීදුරුව තිරස් ස්ථානයක තබා වියළි, ​​පිරිසිදු, බිම් වීදුරුවකින් වීදුරුව මත රුධිරය 45 ° ක කෝණයකින් තබා ගන්න. කෙටි දාරයක් සහිතව, සියලු රුධිරය එය පුරා පැතිරෙන තෙක් බලා සිටීමෙන් පසුව, ඔවුන් ඉක්මනින් වීදුරු ස්ලයිඩයක් මතට ඇද දමනු ලැබේ. වීදුරු ස්ලයිඩය මත දැඩි පීඩනයක් නොවිය යුතුය, මෙය රුධිර සෛල වලට හානි කළ හැකිය. ස්මෑර්ස් වාතයෙන් වියලන ලද සහ සලකුණු කර ඇත (වඩාත් සුදුසු සරල පැන්සලකින්). වියලන ලද ස්මාර් එක ඒකාකාරව සිහින්, කහ පැහැති, ප්‍රමාණවත් ප්‍රමාණයකින්, වීදුරුවේ දාරවල සිට සෙන්ටිමීටර 1.0-1.5 ක් දුරින් පිහිටා තිබිය යුතුය, වීදුරුවේ මුළු දිගම පාහේ අල්ලාගෙන "පැනිකල්" එකකින් අවසන් විය යුතුය. ඝන (ගැඹුරු රෝස) ස්මියර් භාවිතා නොකළ යුතුය, මන්ද ඒවායේ සෛල රූප විද්යාව හඳුනා ගැනීමට අපහසුය.

විවිධ සමාගම් විසින් නිෂ්පාදනය කරන ලද ස්මෑම් සකස් කිරීම සඳහා නිර්මාණය කර ඇති ස්වයංක්රීය උපාංග භාවිතයෙන් සම්මත ගුණාත්මක ස්මෑම් ලබා ගනී.

රුධිර පැල්ලම් සවි කිරීම සහ පැල්ලම් කිරීම. පැල්ලම් කිරීමට පෙර, රක්තපාතය වැලැක්වීම සඳහා මීතයිල් ඇල්කොහොල් වල සාමාන්‍යයෙන් මිනිත්තු 5-10 ක් සඳහා රුධිර ආලේපන සවි කරනු ලැබේ, එය ජල-ද්‍රාව්‍ය සායම් සමඟ පැල්ලම් කිරීමේ ක්‍රියාවලියේදී ජලය සමඟ සම්බන්ධ වීමෙන් හෝ පසුව ජලය සමඟ සම්බන්ධ වීමෙන් සිදුවිය හැකිය. වර්ණ ගැන්වීමේ ශිල්පීය ක්‍රම සමඟ සවි කිරීමේ ක්‍රම පහත විස්තර කෙරේ. රයිට් සහ ලීෂ්මන් පැල්ලම් සඳහා සවි කිරීම අවශ්ය නොවේ, මෙම පැල්ලම් වල මෙතිල් මධ්යසාර අඩංගු වේ.

වියළි ස්පුබ් දින 2 ක් වියළි, ​​​​උණුසුම් ස්ථානයක ගබඩා කළ හැකිය; සවි කිරීමකින් තොරව උණුසුම්, තෙතමනය සහිත වායුගෝලය තුළ ඒවා වඩා අඩුවෙන් ගබඩා කර ඇත.

රුධිර සෛල ප්‍රතික්‍රියාවේ (pH) වෙනස් වන basophilic සහ acidophilic ව්‍යුහයන් අඩංගු වේ. න්යෂ්ටීන් basophilic සහ පැල්ලම් නිල්. අධික basophilic (ආම්ලික) basophil කැටිති ද නිල් වේ. Hemoglobin (මූලික වීම) ආම්ලික ලෙස පැල්ලම්, එනම් රතු. ආම්ලික සහ මූලික ඩයි වර්ග සංයෝගයක් සමඟ පැල්ලම් කිරීම Romanovsky staining ලෙස හඳුන්වන අතර විවිධ වෙනස් කිරීම් ඇත (Pappenheim, Wright, Noht, Leishman, Giemsa, Jayner, ආදිය). මෙතිලීන් නිල් සාමාන්‍යයෙන් ප්‍රධාන සායම් ලෙස භාවිතා කරයි, නමුත් ටොලුයිඩින් නිල් ද භාවිතා වේ. අම්ල සායම් ලෙස, eosin, azure I සහ azure II භාවිතා වේ.

හොඳ පැල්ලම් සඳහා නිර්ණායක: එරිත්‍රෝසයිට් වල රෝස පැහැය, රෝස පසුබිමක නියුට්‍රොෆිලවල කැටිති වල දම් පාට පැල්ලම්, මොනොසයිට් වල මෘදු අසුරොෆිලික් කැටිති.

තීන්ත තනුක කිරීම සඳහා, උදාසීන නැවුම් ආස්රැත ජලය භාවිතා කිරීම වඩාත් සුදුසුය. වායුගෝලයෙන් කාබන් ඩයොක්සයිඩ් ග්‍රහණය කර ගැනීම නිසා පරණ ආසවනය කළ ජලය ආම්ලික වේ. ආසවනය කළ ජලය ක්ෂාරීය නම්, රතු රුධිර සෛල අපිරිසිදු නිල්-කොළ පැහැයක් ගනී; නිල් පැහැයෙන් වර්ණාලේප කළ යුතු ලියුකොසයිටේ කොටසක් දම් පාට වන අතර, ඊසිනොෆිල් කැටිති රෝස පැහැය වෙනුවට නිල් සහ කොළ පැහැයට හැරේ, නියුට්‍රොෆිල් කැට රඳවා තබා ගනී. ආම්ලික ජලයේ දී, එරිත්රෝසයිට් දීප්තිමත් තැඹිලි පැහැයක් ගනී, සහ ලියුකෝසයිට් න්යෂ්ටි ඉතා සුදුමැලි වේ. පරමාදර්ශය වන්නේ pH අගය 7.0 සහිත ආසවනය කළ ජලය වන අතර එය කල් තබා ගැනීම සඳහා බෆර කර ඇත. ඔබට ආසවනය කළ ජලයේ දියකර ඇති භාවිතයට සූදානම් බෆර් ටැබ්ලට් භාවිතා කළ හැකිය.

ඇට මිදුළු පැල්ලම් පැල්ලම් කිරීම සඳහා, pH 7.4-7.5 පැල්ලමක් සුදුසුය.

Noht සහ Pappenheim අනුව පැල්ලම් කිරීමේ ක්රම ඒකාබද්ධ ලෙස පිළිගනු ලැබේ.

සවි කිරීම සඳහා ප්රතික්රියාකාරක: 1) මෙතිල් මධ්යසාර හෝ 2) May-Grunwald eosin-methylene නිල් ද්රාවණය.

Nokht අනුව පැල්ලම් පැල්ලම් සඳහා ප්‍රතික්‍රියාකාරක: 1) azure I හි මූලික ද්‍රාවණය: තීන්ත ග්‍රෑම් 1 ක් ආස්රැත ජලය ලීටර් 1 ක ද්‍රාවණය කර, කාමර උෂ්ණත්වයේ දී දින 12-14 ක් අඳුරු වීදුරු බඳුනක තබා ඇති අතර පසුව එය භාවිතා කරනු ලැබේ; 2) පොටෑසියම් eosin හි මූලික ද්‍රාවණය: තීන්ත ග්‍රෑම් 1 ක් ආස්රැත ජලය ලීටර් 1 ක විසුරුවා හරිනු ලැබේ, කාමර උෂ්ණත්වයේ දී දින 12-14 ක් අඳුරු වීදුරු භාජනයක ඉතිරි වන අතර පසුව එය භාවිතා කරනු ලැබේ; 3) පොස්පේට් බෆරය (වීස් මිශ්‍රණය), pH 7.4-7.5: පොටෑසියම් ඩයිහයිඩ්‍රජන් පොස්පේට් (KH2PO4) 0.49 g සහ සෝඩියම් හයිඩ්‍රජන් පොස්පේට් (Na2HPO4) 0.909 ග්රෑම් මිශ්‍ර කර ආස්රැත ජලය ලීටර් 1 ක දියකර දමන්න; 4) azure-eosin ක්‍රියාකාරී ද්‍රාවණය: භාවිතයට පෙර, azure II කොටස් ද්‍රාවණයෙන් මිලි ලීටර් 25 ක්, පොටෑසියම් ඊසින් තොග ද්‍රාවණයෙන් මිලි ලීටර් 20 ක් සහ බෆර ද්‍රාවණයෙන් මිලි ලීටර් 55 ක් මිශ්‍ර කරන්න (ඩයිවල අනුපාතය වෙනස් විය හැක, ඒවා ස්ථාපිත කර ඇත. ආනුභවිකව කොටස් විසඳුම් නැවුම් කාණ්ඩ සකස් කිරීමේදී).

Pappenheim අනුව පැල්ලම් පැල්ලම් සඳහා ප්රතික්රියාකාරක: 1) May-Grunwald අනුව eosin-methylene blue ද්රාවණය. සූදානම් කළ සායම් ද්‍රාවණයක් නොමැති විට, එය මෙතිල් ඇල්කොහොල් ලීටර් 1 ක වියළි තීන්ත ග්රෑම් 1 ක් විසුරුවා හැරීමෙන් සකස් කර ඇත; 2) Nokht අනුව azure-eosin වැඩ කරන විසඳුම.

ස්මෑම් සවි කිරීම. සවිකරන ද්රාවණය cuvette බවට හෝ බිම නැවතුම්පළක් සහිත පුළුල් මුඛයක් තුළට වත් කරනු ලැබේ. ස්මියර්ස් කන්ටේනරයක තබා ඇති අතර, එය කුවෙට් එකක ගිල්වනු ලැබේ හෝ විනාඩි 5-10 අතර කාලයක් පිඟානක එකින් එක තබා ඇත. කණ්නාඩි සහිත කන්ටේනරය සවි කරන ද්‍රාවණයෙන් ඉවත් කරනු ලැබේ (හෝ වීදුරු කරකැවිල්ලකින් පිටතට ගෙන ස්ථාවරයක තබා ඇත) සහ සම්පූර්ණයෙන්ම වියළී යන තෙක් වාතයේ තබයි.

Nocht අනුව පැල්ලම් කිරීම. වියලන ලද ස්ථාවර ආලේපන, කන්ටේනරයෙන් ඉවත් නොකර, දැඩි ලෙස අර්ථ දක්වා ඇති කාලයක් (විනාඩි 20-45) සඳහා වැඩ කරන තීන්ත විසඳුමක් සහිත කුවෙට් එකක තබා ඇති අතර එය එක් එක් තීන්ත කණ්ඩායම සඳහා ආනුභවිකව තෝරා ගනු ලැබේ. කන්ටේනරයක් සහිත cuvette නොමැති විට, වීදුරුව ඉහළට ආඝාතයට සමාන්තරව තබා ඇති වීදුරු දඬු ("රේල්") දෙකක් මත තිරස් අතට තබා ඇති අතර වැඩ කරන තීන්ත ද්රාවණයෙන් මිලි ලීටර් 3-4 ක් ඒවාට වත් කරනු ලැබේ. කණ්නාඩි සහිත කන්ටේනරය ඩයි සමඟ කුවෙට් එකෙන් පිටතට ගෙන නළ ජලය සහිත කුවෙට් එකක තබා ඇත (කන්ටේනර් නොමැති විට, තීන්ත වීදුරු දඬු වලින් ඉවත් නොකර වතුරෙන් වීදුරුවලින් සෝදා හරිනු ලැබේ). ස්මෑම් වාතයෙන් වියළනු ලැබේ.

පැපන්හයිම් වර්ණ ගැන්වීම. වියළි ස්ථාවර නොවන රුධිර ආලේපන කන්ටේනරයක තබා මිනිත්තු 3-5 ක් සඳහා May-Grunwald ද්‍රාවණයක් සහිත කුවෙට් එකකට පහත් කරනු ලැබේ (නැතහොත් සායම් මිලි ලීටර් 3-4 ක් පයිප්පයකින් ස්ථාවර නොවන ස්මියර් එකකට වත් කරනු ලැබේ). ස්මියර් සහිත කන්ටේනරය ආසවනය කළ ජලය සහිත කුවෙට් එකක සෝදා, පසුව විනාඩි 8-15 අතර කාලයක් Nokht අනුව azure-eosin තීන්ත සහිත කුවෙට් එකක තබා ඇත. "රේල් පීලි" මත තබා ඇති ස්ලයිඩ වලට ආස්රැත ජලය එකතු කරනු ලැබේ, සායම් ඉවතට නොගෙන, විනාඩි 1 ක්, පසුව තීන්ත විනාඩි 8-15 අතර කාලයක් ආලේපනය මත වත් කරනු ලැබේ, පසුව තීන්ත ජලයෙන් සෝදා හරිනු ලැබේ. ස්මෑම් වාතයෙන් වියළනු ලැබේ.

Romanovsky-Giemsa අනුව වර්ණ ගැන්වීම. Nokht අනුව එම ආකාරයෙන්ම නිෂ්පාදනය කර ඇත. සායම් ලෙස, සූදානම් කළ Romanovsky-Giemsa ද්‍රාවණයක් භාවිතා කරනු ලැබේ, එය ආසවනය කළ ජලය මිලි ලීටර් 1 කට ඩයි බිංදු 1 බැගින් භාවිතයට පෙර තනුක කරනු ලැබේ. වර්ණ ගැන්වීමේ කාලය සෑම සායම් කණ්ඩායමක් සඳහාම ආනුභවිකව සකසා ඇත (විනාඩි 25-40).

රයිට් වර්ණ ගැන්වීම. ප්රතික්රියාකාරක. රයිට්ගේ පැල්ලම (වියළි කුඩු, BDH / E. Merck) ග්රෑම් 0.2 ක් මෙතනෝල් මිලි ලීටර් 100 ක් තුළ විසුරුවා හැර දින කිහිපයක් රැඳී සිටීමට ඉඩ සලසයි. එරිත්රෝසයිට් ප්රමාණවත් තරම් පැල්ලම් නොමැති නම්, 0.25% හෝ 0.3% විසඳුමක් පිළියෙළ කරන්න.

වර්ණ ගැන්වීමේ ප්රගතිය. තීන්ත බින්දු කිහිපයක් (8 ක් පමණ) ආලේපනයට යොදනු ලැබේ, මිනිත්තු 2-3 ක් රැඳී සිටීමට ඉඩ දෙනු ලැබේ (තීන්ත වියළී නොයන බවට වග බලා ගන්න), ඉන්පසු සමාන ප්‍රමාණයක බෆර් කළ ජලය ස්මියර් මතට වත් කරනු ලැබේ. තීන්ත පරිණත වී ඇත්නම්, තනුක කළ තීන්ත මතුපිටට ලෝහමය බැබළීමක් සහිත පෙන හෝ පටලයක් දිස්වනු ඇත. තනුක කරන ලද තීන්ත මිනිත්තු 2-3 ක් සඳහා ස්මෑම් මත ඉතිරි වන අතර, පසුව බෆර් විසඳුමක් හෝ ජලය සමග සෝදා ඇත. තීන්ත ආලේපනය මතුපිට පදිංචි වීමට ඉඩ නොදිය යුතුය. මෙය සිදුවුවහොත්, ස්මාර් එක තත්පර 15-20 අතර කාලයක් තනුක නොකළ තීන්ත වලින් පුරවා නැවත බෆර් ද්‍රාවණයකින් හෝ ජලයෙන් පුරවා ඇත.

පොස්පේට් බෆරය සකස් කිරීම.

විසඳුම A (0.2 M KH2PO4): ආස්රැත ජලය ලීටර් 1 ක ලුණු ග්රෑම් 27.2 ක් විසුරුවා හරින්න.

විසඳුම B (0.2 M Na2HPO4): ආස්රැත ජලය ලීටර් 1 ක Na2HPO4 × 2H20 ග්රෑම් 35.6 ක් විසුරුවා හරින්න.

අපේක්ෂිත pH අගය සහිත බෆර ද්‍රාවණයකින් මිලි ලීටර් 100 ක් ලබා ගැනීම සඳහා, A සහ ​​B ද්‍රාවණ වගුවේ දක්වා ඇති ප්‍රමාණයෙන් බැහැර කළ යුතුය. pH අගය pH මීටරයකින් පරීක්ෂා කරනු ලැබේ.

පොස්පේට් බෆර ද්රාවණය සකස් කිරීම

විසඳුම, මිලි

pH අගය

ලීෂ්මන් වර්ණ ගැන්වීම. ප්රතික්රියාකාරක. ලීෂ්මන්ගේ වියළි තීන්ත ග්රෑම් 0.15 ක් නිරපේක්ෂ මෙතිල් මධ්යසාර මිලි ලීටර් 133 ක් තුළ විසුරුවා හරිනු ලැබේ. තීන්ත සම්පූර්ණයෙන්ම විසුරුවා හැරිය යුතුය, එය කලින් මෝටාර් තුළ තීන්ත ස්ඵටික ඇඹරීමට යෝග්ය වේ. වීදුරු නැවතුමක් සහිත බෝතලයක තීන්ත ගබඩා කරන්න, පෙරීම නොකරන්න.

වර්ණ ගැන්වීමේ ප්රගතිය. රයිට් පැල්ලම හා සමානව සිදු කරනු ලැබේ, නමුත් බෆර ද්‍රාවණයේ ද්විත්ව තනුක කිරීමකින්. තීන්ත බින්දු කිහිපයක් (8 ක් පමණ) මිනිත්තු 2 ක් තබා ඇති ස්පීඩ් එකකට වත් කරනු ලැබේ. බෆර් ද්‍රාවණයේ ද්විත්ව ප්‍රමාණයක් (බිංදු 16) එකතු කරන්න, රොක් කිරීමෙන් කලවම් කර විනාඩි 7-10 ක් තබන්න. තීන්ත තත්පර 2-3 කින් ආස්රැත ජලයෙන් සෝදා හරිනු ලැබේ. දිගු සේදීමත් සමඟ වර්ණය නරක අතට හැරේ. ස්මෑර්ස් වාතයේ රාක්කයක වියලනු ලැබේ.

ඝන රුධිර බිංදුවක් සකස් කිරීම. එකිනෙකින් යම් දුරකින් වීදුරු ස්ලයිඩයකට යොදන ලද රුධිර බිංදු තුනක් පිරිසිදු වීදුරු ස්ලයිඩයක කෝණයකින් විෂ්කම්භය සෙන්ටිමීටර 1 ක පමණ ප්‍රමාණයකට පුළුල් කර, පැන්සලකින් සලකුණු කර පැය 1-2 ක් වාතයේ වියළනු ලැබේ.

ඝන රුධිර බිංදුවක් වර්ණ ගැන්වීම. ඝන රුධිර බිංදු ස්ථාවර නොවේ. හොඳින් වියලන ලද ඝන බිංදු සහිත වීදුරු විනිවිදක එකිනෙකට යම් දුරකින් "රේල් පීලි" මත තබා ඇති අතර, Nokht අනුව azure-eosin හි වැඩ කරන විසඳුම විනාඩි 8-10 අතර කාලයක් ඔවුන් මත වත් කරනු ලැබේ. එරිත්රෝසයිට් වල "ලීච්" පවතී. ඉන්පසු තීන්ත ජලය බැස යන අතර Nokht අනුව azure-eosin වැඩ කරන ද්‍රාවණයේ නව කොටසක් මිනිත්තු 30-35 අතර කාලයක් සූදානම මතට වත් කරනු ලැබේ. ස්ලයිඩ පසුව ආස්රැත ජලය සමග ප්රවේශමෙන් සෝදා වියළා ඇත.

ස්මියර් වල ස්වයංක්‍රීය පැල්ලම්

රක්තපාත රසායනාගාරයේ වැඩිපුරම ඉල්ලා සිටින කාර්යයක් වන්නේ රුධිර ආලේපන සකස් කිරීම සහ පැල්ලම් කිරීම බැවින්, ඒවා ස්වයංක්රීය කිරීමට උත්සාහ කිරීම ස්වභාවිකය.

පළමු ස්වයංක්‍රීය ස්මියර් සකස් කිරීමේ පද්ධතිය 1990 දී Sysmex (ජපානය) විසින් සංවර්ධනය කරන ලද අතර දැනට ලොව පුරා පද්ධති 1600 කට වඩා ස්ථාපනය කර ඇත. මෙම කාල පරිච්ෙඡ්දය තුළ රැස් කරන ලද අතිවිශාල අත්දැකීම් නව පරම්පරාවේ පද්ධතියක් සංවර්ධනය කිරීමේදී භාවිතා කරන ලදී - සම්පූර්ණ ස්වයංක්‍රීය SP-1000i ස්මියර් සකස් කිරීම සහ පැයකට 120 ක් දක්වා ධාරිතාවයකින් යුත් පැල්ලම් මධ්‍යස්ථානයක්. SP-1000i බුද්ධිමත් කුඤ්ඤ ක්‍රමය භාවිතා කරමින් ස්මියර් සකස් කිරීමේදී ඉහළ ප්‍රමිතිකරණයක් සහ ගුණාත්මක බවක් ලබා ගනී, එමඟින් පරිශීලකයාට යොදන ලද රුධිර සාම්පල ප්‍රමාණය, ආලේප කරන තලයේ කෝණය, යෙදුම් වේගය සහ රැඳී සිටින කාලය වෙනස් කිරීමට ඉඩ සලසයි. විවිධ නියාමන මට්ටම් 8 සිට 16 දක්වා භාවිතා කරමින් පරීක්ෂණ සාම්පලයේ hematocrit මත. විවෘත හෝ සංවෘත නල වලින් රුධිර සාම්පල අතින් හෝ ස්වයංක්‍රීයව සිදු කළ හැක. Sysmex ස්වයංක්‍රීය ස්මියර් සකස් කිරීම සහ පැල්ලම් කිරීමේ ස්ථානය SP-1000i (ජපානය)

පද්ධතිය මඟින් නම්‍යශීලී ලෙස අභිරුචිකරණය කළ හැකි පැල්ලම් කිරීමේ ප්‍රොටෝකෝල හතක් දක්වා භාවිතා කරන අතර එමඟින් ඔබට ස්මියර් පැල්ලම් වල ගුණාත්මකභාවය ප්‍රමිතිගත කිරීමට සහ ඉහළම අවශ්‍යතා සපුරාලීමට ඉඩ සලසයි. ද්විත්ව සහ තනි පැල්ලම් සඳහා පහත සඳහන් ප්රොටෝකෝල භාවිතා කළ හැකිය: May-Grunwald-Giemsa අනුව, Romanovsky අනුව සහ Romanovsky-Giemsa අනුව. කැසට් පටයකට එක් විනිවිදකයක් පමණක් අඩංගු විශේෂිත කැසට් පද්ධතියක ලේ තැවරී ඇත. මෙම ක්‍රමය සමඟ, රුධිර ආලේපනය සහ පැල්ලම් ප්‍රතික්‍රියාකාරක අතර හොඳ සම්බන්ධතාවයක් සහතික වන අතර ප්‍රතික්‍රියාකාරකයෙන් වාතයට මෙතනෝල් වාෂ්ප වීමක් නොමැත. පැල්ලම් කිරීමට පෙර හොඳ රුධිර සවි කිරීමක් සහතික කිරීම සඳහා, මෙතනෝල් පූර්ව සවි කිරීම සඳහා වෙනම පියවරක් පැල්ලම් කිරීමේ ක්රියාවලියට අනුකලනය වේ.

පැල්ලම් කිරීමේ ප්රොටෝකෝලයේ නම්යශීලීභාවය හේතුවෙන්, ඇටමිදුළු පැල්ලම් සඳහා විශේෂිත ප්රොටෝකෝලයක් භාවිතා කළ හැකිය.

    රක්තපාත අධ්‍යයනය සඳහා ඇටමිදුළු ආලේපන සකස් කිරීමේ ක්‍රමය.

ඇටමිදුළු පරීක්ෂාව - Myelogram ඇටමිදුළු පරීක්ෂණයකින් පිළිතුරු දිය යුතු පළමු ප්‍රශ්නය වන්නේ සෛලවල ප්‍රමාණාත්මක අංශයයි. පර්යන්ත රුධිරය සම්බන්ධයෙන්, විවිධ වර්ගයේ සෛල සංඛ්යාව සහ ප්රතිශතය සඳහා සංඛ්යාත්මක අගයන් ගණනාවක් තීරණය කළ හැකි බව දන්නා කරුණකි, මන්ද ඒවා නිදහස් තත්වයක පවතින අතර සනාල රුධිරය අත්හිටුවීමේදී සාපේක්ෂව ඒකාකාරව බෙදා හරිනු ලැබේ. . ඇට මිදුළු ගැන සම්පූර්ණයෙන්ම වෙනස් දෙයක් පැවසිය හැකිය: hematopoietic පටක සංයුතිය ඉතා විෂමජාතීය වන අතර ඇටමිදුළු සෛල බෙදා හැරීම සමාන නොවේ. මේ අනුව, කුටියේ ඇති මයිලෝකරියෝසයිට් වල සෘජු ගණන සාමාන්‍ය තත්වයේ සහ එකම රෝගයේ රාමුව තුළ ඉතා පුළුල් පරාසයක උච්චාවචනය වේ. පුද්ගලයන් තුළ අප සොයා ගත් අගයන් සාමාන්‍යයෙන් mm3 (Ursya) ට න්‍යෂ්ටික මූලද්‍රව්‍ය 27,000 සිට 112,000 දක්වා පරාසයක පවතී. සාහිත්‍ය දත්ත මිලිමීටර් 3කට 12,000 සහ 300,000 සීමාවන් සමඟ වඩාත් පුළුල් ලෙස උච්චාවචනය වේ (කාට්රයිට්, පිටුව). කේන්ද්රාපසාරී කිරීමෙන් පසුව, පහත සඳහන් ස්ථර 4 hematocrit නලයේ දක්නට ලැබේ: 1) ඉහළ මේද කහ ස්ථරය; 2) ප්ලාස්මා; 3) න්යෂ්ටික සෛල වලින් සාදන ලද අළු-සුදු තට්ටුවක්; 4) එරිත්රෝසයිට් වලින් සමන්විත රතු තට්ටුවක්. න්‍යෂ්ටික සෛලවල අළු-සුදු ස්ථරය මැනීම (මයිලෝක්‍රිට්) සීමිත අගයක් හෝ නොමඟ යවන සුළු ය, මන්ද සාමාන්‍ය පුද්ගලයින් තුළ ඇති අගයන් ද සැලකිය යුතු උච්චාවචනයන් පෙන්නුම් කරයි. මීට අමතරව, න්යෂ්ටික සෛල මෙම ස්ථරයේ පමණක් නොව, මේද හා එරිත්රෝසයිට් ස්ථර වලද දක්නට ලැබේ. නමුත් අධි ප්ලාස්මා ඉවත් කිරීමෙන් පසු අළු-සුදු පැහැති තට්ටුවකින් ඇටමිදුළු සාන්ද්‍රණයේ පැල්ලම් සකස් කළ හැකිය. සෛලවල සෘජු ස්මෑම් දුර්වල වන අවස්ථාවන්හිදී රෝග විනිශ්චය කිරීමේ ක්රියාවලියේදී ඒවා ප්රයෝජනවත් බව ඔප්පු වී ඇත. myelokaryocyte chamber counts සහ myelocrit අධිෂ්ඨානයන් සීමිත ප්‍රජනන හැකියාවක් සහිත ආසන්න ප්‍රතිඵල පමණක් සපයන බැවින්, මෙම ප්‍රමාණකරණ ක්‍රම සෑහීමකට පත් නොවේ. චූෂණ සිදුරු කිරීමේදී නිස්සාරණය කරන ද්‍රව්‍ය විවිධ ප්‍රමාණවලින් රුධිරය සමඟ මිශ්‍ර වූ ඇටමිදුළු සාම්පලයකි. ඇට මිදුළු රුධිරය සමඟ තනුක කිරීමේ මට්ටම සාධක ගණනාවක් මත රඳා පවතී. 32P ලේබල් කිරීම මගින් ඔප්පු කරන ලද පරිදි, අපේක්ෂා කරන ලද අස්ථි මිදුළු රුධිරය සමග තනුක කිරීම 40% සිට 100% දක්වා පරාසයක පවතී. කෙසේ වෙතත්, රෝග විනිශ්චය කිරීම සඳහා ඇටමිදුළු අධ්‍යයනය මූලික වශයෙන් සෛලීය අන්තර්ගතයේ ගුණාත්මක අධ්‍යයනයක් මත පදනම් වන අතර දෙවනුව මෙම අන්තර්ගතයේ ප්‍රමාණාත්මක අගයන් මත පමණක් බව සැලකිල්ලට ගත යුතුය. ඇට මිදුළු සෛල නිර්ණය කිරීම සඳහා ප්‍රමාණාත්මක ක්‍රම සාමාන්‍ය සාම්පල හා සසඳන විට ඇටමිදුළුවල සෛලීය සංයුතියේ අර්ධ ප්‍රමාණාත්මක තක්සේරුවකින් සමන්විත වන්නේ එබැවිනි: අ) තැළුණු ගැටිති සහිත ස්මියර්; b) histological අංශ. ස්මියර් පිළිබඳ අධ්යයනය ප්රධාන වශයෙන් වියළි කාචයක් සමඟ, ස්මෑම් කිහිපයක් මත, පහත සඳහන් අරමුණු සහිතව සිදු කරනු ලැබේ: a) අස්ථි ඇටමිදුළු සෛල ස්කන්ධයේ අර්ධ ප්රමාණාත්මක තක්සේරුව; b) megakaryocytes වල පැවැත්ම සහ ඝනත්වය තීරණය කිරීම; ඇ) යෝධ සෛල හෝ අසාමාන්ය සෛලවල කූඩු හඳුනා ගැනීම; ඈ) ගිල්වීමෙන් පර්යේෂණ සඳහා වඩාත් සුදුසු ප්රදේශ හඳුනා ගැනීම. ඇට මිදුළු අංශු තලා දැමීමෙන් ලබාගත් ස්මෑර් මත, පහත දැක්වෙන සංකේන්ද්රික කලාප තුන වෙන් කර ඇත: a) මධ්යම; ආ) බාහිර; ඇ) අතරමැදි. මධ්‍යම කලාපය සෑදී ඇත්තේ මේද රික්තක, ස්ට්‍රෝමාල් සෛල, ග්‍රැනුලෝසයිට් සහ විනාශ වූ සෛල ගණනාවකිනි. පිටත කලාපයේ විශාල රුධිර ප්‍රමාණයක් අඩංගු වන අතර එමඟින් ඇටමිදුළු සෛල තනුක කරයි. සිහින් ස්මෑම් මෙන්, එය මයිලෝයිඩ් සෛල සහ එරිත්රෝසයිට් වල රූප විද්යාත්මක තොරතුරු අධ්යයනය කිරීමට පමණක් දායක වේ. වඩාත්ම ඝන සෛල ස්කන්ධය අතරමැදි කලාපයේ පිහිටා ඇති අතර, එය දක්වා ඇති සියලුම ප්රශ්න පැහැදිලි කළ හැකි ප්රශස්ත අධ්යයනයකට ඉඩ සලසයි. මෙහිදී ඇටමිදුළු සෛල හොඳින් සංරක්ෂණය කර ඇති අතර, ඇටමිදුළුවල දක්නට ලැබෙන පරිදි, අයිලට් හෝ කූඩුවල සකස් කර ඇත. අස්ථි ඇටමිදුළු භූ විෂමතාව පවත්වා ගනිමින්, මෙම කලාපය අධ්යයනය කිරීමේ ප්රතිඵල වඩාත් සමජාතීය වන අතර එහි හිස්ටොලොජිකල් රූප සමඟ සංසන්දනය කිරීමෙන් තහවුරු වන අස්ථි ඇටමිදුළුවල සැබෑ තත්වයට අනුරූප වේ. සෛල ඝනත්වයේ අර්ධ ප්‍රමාණාත්මක නිර්ණය ප්‍රකාශ වන්නේ: a) සාමාන්‍ය, b) පොහොසත් හෝ c) සාමාන්‍ය ඇටමිදුළුවලට සාපේක්ෂව කෙට්ටු. සාමාන්‍ය හෝ බහුල සෛල ස්කන්ධයක් හඳුනා ගැනීම වටිනා සොයා ගැනීමක් වන අතර, අස්ථි මිදුළු ප්‍රවේශමෙන් සලකා බැලිය යුතුය. සැබෑ හයිපොප්ලාසියාව ඇති බව සනාථ කිරීම සඳහා, තහඩු කිහිපයක් පරීක්ෂා කළ යුතුය, අස්ථි කොටස් කිහිපයක සිදුරක් සහ / හෝ අස්ථි බයොප්සි සිදු කළ යුතුය. අස්ථි ඇටමිදුළු සෛල ස්කන්ධය පිළිබඳ වඩාත් නිවැරදි තොරතුරු ලබා ගන්නේ histological අංශ පරීක්ෂා කිරීමෙනි. වැඩිහිටියෙකු තුළ, මේදය සහ සක්‍රීය සෛල පරෙන්චිමා විසින් අල්ලා ගන්නා අවකාශයේ අනුපාතය සාමාන්‍යයෙන් 1:1 හෝ ​​2:1 වේ. සමහර කතුවරුන් අස්ථි ඇටමිදුළුවල ගැටිති වලින් හතරෙන් එකකට වඩා අඩු රුධිරාණු සෛල වාසය කරන විට අස්ථි ඇටමිදුළු හයිපොසලියුලර් ලෙස සලකයි. රෝග විනිශ්චය කිරීම සඳහා ගුණාත්මක ඇටමිදුළු පරීක්ෂණයක් අත්යවශ්ය වේ. එය සිදු කරනු ලබන්නේ, ගිල්වීමෙන්, තුනී ස්මෑම් සහ, විශේෂයෙන්, අතරමැදි කලාපයේ සිට තලා දැමූ ගැටිති සහිත ස්මෑම් මත ය. පැහැදිලිව නිර්වචනය කරන ලද සහ රූප විද්‍යාත්මකව හොඳින් සංරක්ෂණය කර ඇති සෛල සහිත හොඳම නිවැරදිව දිගු කරන ලද සහ පැල්ලම් සහිත ආලේපන තෝරා ගැනීම නිර්දේශ කෙරේ. මෙම අධ්යයනය ගෙනහැර දක්වයි: a) විවිධ වර්ගයේ මයිලෝයිඩ් සෛල හඳුනා ගැනීම; b) එක් එක් සෛල පේළියේ මේරීමේ මට්ටම තීරණය කිරීම; ඇ) granulocytes සහ erythroblasts (G/E) අතර සම්බන්ධය පැහැදිලි කිරීම; d) mitosis අදියර තුළ සෛල හඳුනා ගැනීම; e) හමු වූ පරමාණුක සෛල පිළිබඳ විස්තරය. ස්මියර් කිහිපයක් පරීක්ෂා කිරීමෙන් පසුව, සවිස්තරාත්මක විස්තරාත්මක “මයිලෝග්‍රෑම්” සම්පාදනය කරනු ලැබේ (ස්මියර් විකේතනය කිරීමෙන් පසු කරන ලද නිගමන අඩංගු වේ), නැතහොත් අවම වශයෙන් මූලද්‍රව්‍ය 300-500 කින් පිහිටුවා ඇති ප්‍රතිශත අනුව මයිලෝග්‍රෑම්. ප්‍රතිශත myelogram සම්පාදනය කිරීමට ක්‍රම දෙකක් තිබේ: 1) ඉතිරි සෛල පේළි 100 granulocytes වෙත පැවරීම; 2) මුළු ඇටමිදුළු සෛල සංඛ්‍යාවෙන් එක් එක් වර්ගයේ සෛලවල ප්‍රතිශත සංදර්ශනය. සංඛ්යානමය දෘෂ්ටි කෝණයකින්, අවසාන ක්රමය වඩාත් නිවැරදි බව පෙනෙන අතර පෙනෙන පරිදි ඇට මිදුළුවල සෛලීය සංයුතියේ සැබෑ චිත්රය පිළිබිඹු කරයි. අස්ථි ඇටමිදුළු වැනි විෂමජාතීය පටකයක සැබෑ සාමාන්‍ය අගයන් තීරණය කිරීම අපහසු බැවින් තනි කතුවරුන් විසින් පිහිටුවන ලද සූත්‍ර සැලකිය යුතු ලෙස වෙනස් වේ. වින්ට්‍රෝබ්ට අනුව, සාමාන්‍ය පුද්ගලයින් 12 දෙනෙකුගෙන් තෝරාගත් ඇටමිදුළු සාම්පල අධ්‍යයනයේ ප්‍රති results ල වගුවේ දැක්වේ. සාමාන්ය myelogram

Myelogram පරාමිතීන් මධ්යන්ය අගය (%) උච්චාවචන පරාසය (%)

රෙටිකුලර් සෛල 0.9 0.1-1.6 වෙනස් නොකළ පිපිරුම් 0.6 0.1-1.1 මයිලෝබ්ලාස්ට් 1.0 0.2-1.7

Promyelocytes 2.5 1.0-4.1

Myelocytes neutrophils 9.6 7.0-12.2 Metamyelocytes neutrophils 11.5 8.0-15.0 Stab neutrophils 18.2 12.8-23.7 Segmented neutrophils 18.6 13.1-24.1 සම්පූර්ණ නියුට්‍රොෆිල් සෛල 60.8 52.7-68.9 Eosinophilic myelocytes 0.1 0.0-0.2 Eosinophilic metamyelocytes 0.2 0.1-0.4 Eosinophils 2.8 0.4-5.2

eosinophilic ශ්රේණියේ සම්පූර්ණ සෛල 3.2 0.5-5.8 Basophilic myelocytes 0.1 0-0.3

Basophils 0.1 0-0.3

basophilic ශ්රේණියේ සම්පූර්ණ සෛල 0.2 0-0.5ලිම්ෆොබ්ලාස්ට් 0.1 0-0.2

Prolymphocytes 0.1 0-0.2

ලිම්ෆොසයිට් 8.8 4.3-13.3

සම්පූර්ණ ලිම්ෆොයිඩ් සෛල 9.0 4.3-13.7මොනොබ්ලාස්ට් 0.1 0-0.2

මොනොසයිට් 1.9 0.7-3.1

ප්ලාස්මබ්ලාස්ට් 0.1 0-0.2

Proplasmocytes 0.1 0.1-0.2

ප්ලාස්මා සෛල 0.9 0.1-1.8

Erythroblasts 0.6 0.2-1.1

Basophilic normoblasts 3.6 1.4-5.8 Polychromatophilic normoblasts 12.9 8.9-16.9 Oxyphilic normoblasts 3.2 0.8-5.6

සම්පූර්ණ එරිත්රොයිඩ් සෛල 20.5 14.5-26.5 Megakaryocytes 0.4 0.2-0.6

සෞඛ්‍ය සම්පන්න පුද්ගලයන් පිළිබඳ අපගේ අධ්‍යයනයන්ට අනුව, ප්‍රතිඵල පහත පරිදි වේ:

ග්‍රැනියුලෝසයිට් ගණනාවක් 56-70%,

erythroblastic ශ්‍රේණි 23-30%, lymphoplasmacytic ශ්‍රේණි 5-10%, monocyto-macrophage ශ්‍රේණි 1-2% සහ megakaryocyte ශ්‍රේණි 0.1-0.8% (Ursya). සාමාන්‍ය මයිලෝයිඩ් පේළිවල අනුපාතය වෙනස් වීම හෝ අසාමාන්‍ය සෛල සමඟ ඒවා ප්‍රතිස්ථාපනය කිරීම බොහෝ විට රෝගයේ වර්ගය යෝජනා කරයි. රෙටිකුලර් සෛල අඩුවෙන් දිස්වන අතර, එපමනක් නොව, කුඩා සංඛ්‍යාවකින්. අහම්බෙන්, ස්මියර් (හෝ ඇට මිදුළු ප්‍රතිපෝෂණ) ඔස්ටියෝබ්ලාස්ට් සහ/හෝ ඔස්ටියෝක්ලාස්ට් පෙන්වයි, ඒවා නියෝප්ලාස්ටික් සෛල ලෙස වරදවා වටහා නොගත යුතුය. ඔවුන්ගේ පැමිණීම ළමුන් තුළ බොහෝ විට නිරීක්ෂණය කරනු ලැබේ, ප්‍රාථමික මයිලෝෆයිබ්‍රෝසිස් හෝ දෙවනුව, පිළිකාමය මෙටාස්ටේස් වලින් පසුව, උග්‍ර ලියුකේමියාව, ඔස්ටියෝපොරෝසිස් යනාදිය ඇති වැඩිහිටියන් තුළ අඩු වාර ගණනක් දක්නට ලැබේ. සාමාන්‍ය වැඩිහිටියෙකු තුළ, මෙම අනුපාතය සාමාන්‍යයෙන් 3/1 හෝ 4/1 වන අතර, සීමාවන් 2/1 (නොමේරූ ග්‍රැනියුලෝසයිට් පමණක් ඇතුළත් වන විට) සහ 5/1 (සියලු ග්‍රැනියුලෝසයිට් සම්බන්ධයෙන් - පරිණත සහ නොමේරූ) ලෙස ගණන් බලා ඇත. H/E අනුපාතය වයස සමඟ උච්චාවචනය වේ: උපතේදී එය කුඩා වේ (1.8/1), වයස සති 2 දී එය 11/1 දක්වා ඉහළ යයි, පසුව ක්රමයෙන් අඩු වේ, සහ වසරක් වයසැති දරුවන් තුළ එය අගයන් කරා ළඟා වේ. වැඩිහිටියෙකුගේ. H/E අනුපාතය ගෝලීය ඇටමිදුළු hypo- හෝ hyperplasia අවස්ථාවන්හිදී සාමාන්ය වේ, මෙන්ම මෙම අනුපාතය ගණනය ඇතුළත් නොවන තනි තනි සෛල පැතිරීම, උදාහරණයක් ලෙස, plasmacytoma දී. ලියුකේමියාව, ලියුකෝමා වැනි ප්‍රතික්‍රියා සහ එරිත්‍රොබ්ලාස්ටොපීනියා වලදී, අනුපාතය ඉහළ මට්ටමක පවතින අතර, එරිත්‍රොබ්ලාස්ටික් හයිපර්ප්ලාසියාව සහිත රක්තහීනතාවයකදී එය අඩු හෝ ප්‍රතිලෝම වේ (මෙගලොබ්ලාස්ටික්, රක්තහීන රක්තහීනතාවය). ස්මෑම් අධ්යයනය කිරීමෙන් පසු ලබාගත් myelogram දත්ත නිකුත් කිරීමට පෙර, එය පැහැදිලි කිරීම අවශ්ය වේ: a) සිදුරු කරන ස්ථානය; b) අස්ථි ඝනත්වය; ඇ) චූෂණ සිදු වූ කොන්දේසි; ඈ) තෝරාගත් ද්රව්යයේ මැක්රොස්කොපික් අංශය. ඇටමිදුළු පරීක්ෂාව යනු විවිධ හා විවිධ දත්ත ඒකාබද්ධ කිරීම මත පදනම් වූ සංකීර්ණ ක්රියාවලියකි. එහි ප්‍රති result ලය සාමාන්‍ය නිගමන පිළිබිඹු කළ යුතුය, තනි පුද්ගල සංඛ්‍යාවල යාන්ත්‍රික ලියාපදිංචියට වඩා අනුමාන මත පදනම්ව, එපමනක් නොව, උච්චාවචනය වේ. ඕනෑම මයිලෝග්‍රෑම් නිගමනයක් මගින් අස්ථි මිදුළු අධ්‍යයනයෙන් පැන නගින අතිරේක අධ්‍යයනයන් සඳහා රෝග විනිශ්චය හෝ ඇඟවීම් පැහැදිලි කළ යුතුය. රුධිර රෝග වලදී, චූෂණ සිදුරු කිරීම 80% ක්ම ස්මියර් සහ ගැටිති සහිත කොටස් ආධාරයෙන් රෝග විනිශ්චය පැහැදිලි කිරීමට උපකාරී වේ. වෙනත් අවස්ථාවල දී, අස්ථි බයොප්සි සහ අස්ථි ඇටමිදුළුවල හිස්ටොලොජිකල් පරීක්ෂණය පෙන්නුම් කරයි. ජෛව විද්‍යාත්මක තේරීම සහ හිස්ටෝවිද්‍යාත්මක පරීක්ෂණය අවශ්‍ය බව පෙනේ: අ) ප්‍රාථමික හෝ ද්විතියික මයිලෝෆයිබ්‍රෝසිස්; b) අස්ථි ඇටමිදුළු ඇප්ලාසියාව හෝ හයිපොප්ලාසියාව; ඇ) granulomatous වර්ගයේ තුවාල සමග ඇතිවන රෝග (උදා. , Godgkin ගේ රෝගය, sarcoidosis, ක්ෂය රෝගය, ආදිය); ඈ) පිළිකාමය පරිවෘත්තීය; e) සෑම අවස්ථාවකදීම සිදුරු කිරීම මගින් තෝරාගත් ද්රව්යය අසතුටුදායක වන විට හෝ ඇටමිදුළුවල අංගය ඒත්තු ගැන්විය නොහැකිය. ජෛව දෘෂ්‍ය නියැදීමෙන් පසුව, සෛල විද්‍යාත්මක පරීක්‍ෂණය සඳහා හැඟීම් සකස් කරනු ලැබේ, මන්දයත් හිස්ටොලොජිකල් අංශ ජනාකීර්ණ, විසිරී නැති සහ ප්‍රමිතිගත නොවූ රක්තපාත සෛලවල ව්‍යුහාත්මක තොරතුරු පිළිබඳ කුඩා තොරතුරු සපයන බැවිනි. මීට අමතරව, සවි කිරීම සෛල ඉවත් කිරීමට හේතු වන අතර histological staining cytological staining වලට වඩා අඩු තෝරා ගැනීමකි. අස්ථි ඇටමිදුළු සම්පූර්ණ පරීක්ෂණයකට සෛල විද්‍යාත්මක - තැලීම් හෝ හැඟීම් සහ හිස්ටොලොජිකල් - අධ්‍යයනයේ කොටස් සම්බන්ධ වන්නේ එබැවිනි. ඇට මිදුළු පරීක්ෂා කිරීමේ සෛල විද්‍යාත්මක හා හිස්ටෝල් විද්‍යාත්මක ක්‍රම බැහැර කර නොමැති බව මතක තබා ගත යුතුය, නමුත් ඊට ප්‍රතිවිරුද්ධව, අනුපූරක වේ: බයොප්සි යනු ප්‍රමාණාත්මක හා වාස්තු විද්‍යාත්මක ක්‍රමයක් වන අතර මයිලෝග්‍රෑම් ගුණාත්මක හා සෛල විද්‍යාත්මක ක්‍රමයකි.

    Goryaev කුටියේ රුධිර සෛල ගණනය කිරීමේ ක්රමය.

Goryaev ගේ කුටිය - දී ඇති දියර පරිමාවක සෛල ගණන ගණනය කිරීමට නිර්මාණය කර ඇති උපකරණයකි. රුධිර සාම්පලයේ පිහිටුවා ඇති මූලද්රව්ය සංඛ්යාව තීරණය කිරීම සඳහා සාමාන්යයෙන් භාවිතා වේ.

කුටි ඝන වීදුරු විනිවිදකයකින් සමන්විත වන අතර ඒවාට තීර්යක් තව් යොදන අතර තීර්යක් ලෙස සකසා ඇති පැතලි ප්‍රදේශ තුනක් සාදයි.

මැද වේදිකාව කල්පවත්නා තව් එකකින් දෙකට බෙදී ඇති අතර, ඒ සෑම එකක්ම එහි ජාලක කැටයම් කර ඇත. Goryaev කුටියේ මැද වේදිකාවේ දෙපසම මැද එකට වඩා 0.1 mm උස (Fuchs-Rosenthal කුටියේ 0.2 mm) තවත් දෙකක් ඇත. මෙම වෙබ් අඩවි වල ගුවන් යානා ඊනියා නිව්ටෝනියානු මුදු පෙනෙන තෙක් ආවරණ ඇඹරීමට සේවය කරයි. ආවරණ වීදුරුව අතුල්ලමින් පසු, කුටියක් නිර්මාණය කර, දෙපැත්තකින් වසා ඇති අතර, අනෙක් දෙකෙහි කුටිය පුරවා ඇති හිඩැස් (කේශනාලිකා අවකාශයන්) ඇත.

ජාල මූලධර්මය සමාන වේ. ඒවා විවිධ ආකාරවලින් කාණ්ඩගත කර ඇති වර්ග ගණනකට බෙදා ඇත.

සියලුම ජාලකවල නියත අගයක් යනු ඊනියා "කුඩා චතුරස්රය" වන අතර එහි පැත්ත 1/20 mm වේ, එබැවින් එහි ප්රදේශය 1/400 mm2 වේ.

Goryaev කැමරාව භාවිතයෙන්, අන්වීක්ෂයේ විශාලනය තීරණය කිරීමට ද හැකිය.

පිටතින්, එය විනිවිද පෙනෙන සමාන්තර නලයක් (වීදුරු ස්ලයිඩයක්) වන අතර, කට්ට සහ අන්වීක්ෂීය ජාලයක් යොදනු ලැබේ. ජාලක සෛලයේ කුඩා බෙදීම්වල මානයන් 0.05 mm වන අතර විශාල බෙදීම් 0.2 mm වේ. මෙම අවස්ථාවෙහිදී, ජාලකය යාබද වේදිකා දෙකකට වඩා 0.1 mm පහතින් පිහිටා ඇති වේදිකාවක් (වීදුරු කොටස) වෙත යොදනු ලැබේ. මෙම ප්රදේශ ආවරණ ලැප් කිරීම සඳහා භාවිතා වේ. එහි ප්රතිඵලයක් වශයෙන්, Goryaev ජාලයේ විශාල බෙදීම් මගින් සාදන ලද චතුරස්රයට ඉහලින් ඇති ද්රව පරිමාව මයික්රොලීටර 0.004 කි. විශාල චතුරස්‍රයක් හරහා ඇති සෛල ගණන ගණනය කිරීමෙන්, සූත්‍රය භාවිතයෙන් අත්හිටුවීමේදී ලබා දී ඇති සෛල වර්ගයක ඝනත්වය ගණනය කළ හැක:

සෛල ගණන/මිලි = විශාල චතුරස්‍රයට ඉහළින් ඇති සෛල ගණන * 2.5 10^5

Goryaev කැමරාව එක්තරා ආකාරයක ප්‍රමිතියක් ලෙස භාවිතා කරමින්, ඔබට සූත්‍රය මගින් අන්වීක්ෂයේ විශාලනය තීරණය කළ හැකිය:

Kg=(m2-m1)/(a*N)

කොහෙද kgඅන්වීක්ෂයේ විශාලනය වේ;

එම් 1 - Goryaev කුටියේ සෛලයේ වම් මායිමේ පිහිටීම;

එම් 2 - සෛලයක හෝ සෛල සමූහයක දකුණු මායිමේ පිහිටීම;

එන්- මනින ලද මායිම් අතර සෛල සංඛ්යාව;

- Goryaev කුටියේ සෛල ප්රමාණය (මි.මී. 0.05 ට සමාන).

සංස්කෘතියේ සෛල ගණන ගණනය කිරීම සඳහා Goryaev කුටිය ද භාවිතා වේ.

Goryaev කුටියේ රුධිර සෛල ගණනය කිරීමේ සූත්‍රය වන්නේ -

x = (a 400 c) / b,

මෙහි x යනු 1 mm3 හි හැඩැති මූලද්‍රව්‍යවල අපේක්ෂිත සංඛ්‍යාවයි; a - කුටියේ යම් පරිමාවක ගණනය කරන ලද හැඩැති මූලද්රව්ය එකතුව; b - ගණන් කළ කුඩා කොටු ගණන; c - රුධිරය තනුක කිරීම.

Goryaev කුටියේ Oocysts ගණනය කිරීමේ ක්රමය.

මෙම ක්‍රමය සාමාන්‍යයෙන් භාවිතා කරනුයේ නිශ්චිතව නිර්ණය කරන ලද ඕසිස්ට් ප්‍රමාණයකින් සතුන්ට පර්යේෂණාත්මකව ආසාදනය කරන විටය (සුදුසු ප්‍රමාණයක අත්හිටුවීමේ මිලිලීටර් ප්‍රමාණයක් සතාට එන්නත් කරනු ලැබේ). Oocysts අඩංගු අත්හිටුවීම 1 ml Goryaev කුටියේ තබා ඇත. Goryaev කුටියේ පරිමාව 0.9 m3 වන බැවින්, ගණන් කරන ලද oocysts සංඛ්යාව 1111 කින් ගුණ කරනු ලැබේ. ප්රතිඵලය වන සංඛ්යාව විසඳුමේ 1 cm3 ocysts ගණනට ප්රමාණවත් වේ. වඩාත් නිවැරදි නිර්ණය සඳහා, ගණනය කිරීම් අවම වශයෙන් තුන් වතාවක් සිදු කළ යුතු අතර, පසුව අංක ගණිත මධ්යන්ය අගය ව්යුත්පන්න කළ යුතුය. ආසාදනය සඳහා අවශ්‍ය ඕසිස්ට් සංඛ්‍යාව මනිනු ලබන්නේ උපාධි සහිත පයිප්පයක් භාවිතා කරමිනි. ඉන්කියුබේෂන් මාධ්‍යයේ ඕසිස්ට් වඩාත් ඒකාකාර ව්‍යාප්තියක් සඳහා, නලයේ අන්තර්ගතය නැවත නැවතත් සොලවා ගත යුතුය.

Goryaev කුටියේ එරිත්රෝසයිට් ගණන

මූලධර්මය. නිශ්චිත රුධිර ප්‍රමාණය නිශ්චිත ද්‍රව ප්‍රමාණයක ඒකාකාරව මිශ්‍ර කර රුධිර අත්හිටුවීම තනි ස්ථරයක බෙදා හරින ලද දන්නා පරිමාවක් සහිත කුටියක තබා ඇත. කුටියේ පතුල ප්‍රස්ථාර කර ඇති අතර එමඟින් එරිත්‍රෝසයිට් නිවැරදිව ගණනය කිරීමට හැකි වේ.

ප්රතික්රියාකාරක: 0.9% සෝඩියම් ක්ලෝරයිඩ් ද්රාවණය.

විශේෂ උපකරණ: අන්වීක්ෂය, Goryaev කැමරාව, රසායනාගාර පරීක්ෂණ නල හෝ Saly ගේ hemometer සිට කේශනාලිකා.

අර්ථ දැක්වීමේ ප්රගතිය. වියළි පිරිසිදු පරීක්ෂණ නලයකට 0.9% සෝඩියම් ක්ලෝරයිඩ් ද්‍රාවණයෙන් මිලි ලීටර් 8 ක් සහ රුධිරය මිලි ලීටර් 0.02 ක් එක් කරන්න. පයිප්පයේ තුණ්ඩය මූලික වශයෙන් පිස දමනු ලැබේ, රුධිරය නළයේ පතුලට ගසාගෙන යන අතර, දියරයේ ඉහළ ස්ථරයෙන් පයිප්ප හොඳින් සෝදා හරිනු ලැබේ. නලයේ අන්තර්ගතය හොඳින් මිශ්ර කරන්න. 1: 400 ක රුධිර තනුකයක් ලබා ගනී, එනම්, රුධිරය 400 වතාවක් තනුක කර ඇත. රුධිරය ඝන වීමත් සමඟ එය 500, 600, 700, 800 ගුණයකින් තනුක කිරීම යෝග්ය වේ.

කුටිය සහ ආවරණ සෝදා වියළා පිස දැමිය යුතුය. කවර්ස්ලිප් කුටියට එරෙහිව අතුල්ලනු ලැබේ, එවිට අයිඩිසෙන්ට් මුදු දිස් වේ. පරීක්ෂණ නළයෙන් තනුක කළ රුධිර බිංදුවක් ගෙන එය කුටීරය පුරවා, ආවරණ දාරයේ යොදන්න.එරිත්‍රෝසයිට් අඩු විශාලන අන්වීක්ෂයකින් (x8 අරමුණ, x10 හෝ x15 අක්ෂි) කුටිය පිරවීමෙන් මිනිත්තු 1 කට පසු ගණනය කෙරේ. ආවරණය කරන ලද ප්රාචීරය හෝ පහත් කරන ලද කන්ඩෙන්සර් (අඳුරු දර්ශන ක්ෂේත්රයක) .

Erythrocytes විශාල (හෝ කුඩා 80) වර්ග පහකින් විකර්ණ ලෙස සකස් කර ඇත. කුඩා චතුරස්රය තුළ මෙන්ම එහි වම් සහ ඉහළ බිත්තිවල ඇති එරිත්රෝසයිට් සැලකිල්ලට ගනී. චතුරස්රයේ දකුණු සහ පහළ රේඛාවල පිහිටා ඇති සෛල ගණන් නොගනී.

ගණනය කිරීම: කුඩා කොටු 80 ක සෛල සංඛ්‍යාව 1: 400 රුධිර තනුක කිරීමේදී 20,000 කින්ද, 1: 500 තනුක කිරීමේදී 25,000 කින් හෝ 1: 600 තනුක කිරීමේදී 30,000 කින් ගුණ කර අවසාන ප්‍රතිඵලය ලබා ගනී. 1 μl සඳහා මිලියන ගණනින්. මෙම අවස්ථාවෙහිදී, එක් කුඩා චතුරස්රයක පරිමාව 1/4000 μl බව උපකල්පනය කෙරේ. ලීටර් 1 ක සෛල ගණනය කිරීම සඳහා, 1 µl හි රතු රුධිර සෛල ගණන 1,000,000 කින් ගුණ කරනු ලැබේ.

සටහන. කැටි ගැසීම් සමඟ රුධිරය අධ්යයනය කිරීමට අවසර නැත; කුටිය පිරවීමෙන් පසු වහාම සෛල ගණන (මිනිත්තු 1 ක් බලා සිටීමකින් තොරව); දුර්වල ලෙස සෝදා වියළන ලද පයිප්ප සහ පරීක්ෂණ නල භාවිතය, රක්තපාතයට හේතු වන දුර්වල ගුණාත්මක ප්රතික්රියාකාරක. සියලුම ගණනය කිරීමේ රීති වලට යටත්ව, දෝෂය සාමාන්යය ± 2.5% වේ.

විෂබීජ නාශක නීති

භාවිතයෙන් පසු, Goryaev කැමරාව විෂබීජහරණය කළ යුතුය 3% විසඳුමහයිඩ්‍රජන් පෙරොක්සයිඩ්, ආසවනය කළ ජලය සමග මෙයට පිළියමක් සහ මෘදු රෙද්දකින් වියළා ගන්න. කැමරාව වියළි ස්ථානයක තබා ගන්න.

    රක්තපාත විශ්ලේෂක මත වැඩ කිරීමේ ක්රමය.

විශ්ලේෂක-රක්තපාත- ප්‍රමාණාත්මක පර්යේෂණ සඳහා නිර්මාණය කර ඇති උපකරණයක් (උපකරණ කට්ටලයක්). සෛල ලේසායනික රෝග විනිශ්චය රසායනාගාරවල. ස්වයංක්රීය හෝ අර්ධ ස්වයංක්රීය විය හැක. අර්ධ ස්වයංක්‍රීය රක්තපාත විශ්ලේෂකය ස්වයංක්‍රීය එකකින් වෙනස් වන්නේ රුධිර සාම්පලයක් තනුක කිරීමේ ක්‍රියාවලිය වෙනම උපාංගයක් මගින් සිදු කරන බැවිනි - තනුක කරන්නා. සම්පූර්ණ රුධිර තනුක සකස් කිරීමෙන් පසු, ක්රියාකරු විසින් තනුක කළ නියැදිය මැනුම් මොඩියුලයට මාරු කළ යුතුය. දැනට, අර්ධ ස්වයංක්රීය විශ්ලේෂක ප්රායෝගිකව නිෂ්පාදනය නොකෙරේ.

ස්වයංක්‍රීය රක්තවේද විශ්ලේෂකය යනු සම්පූර්ණ ස්වයංක්‍රීය උපකරණයක් වන අතර එහි සම්පූර්ණ විශ්ලේෂණ ක්‍රියාවලිය ස්වයංක්‍රීයව සිදු කෙරේ.

නවීන ස්වයංක්‍රීය විශ්ලේෂක පැයකට සාම්පල දුසිම් ගණනක් (60 සිට 120 දක්වා) සැකසීමට, පිරිවිතරයන්ට නිරවද්‍යතාවයෙන් සහ ප්‍රතිනිෂ්පාදනය කිරීමට මෙන්ම පරීක්ෂණ ප්‍රතිඵල බිල්ට් මතකයේ ගබඩා කිරීමට සහ අවශ්‍ය නම් ඒවා බිල්ට් මත මුද්‍රණය කිරීමට හැකියාව ඇත. තාප මුද්‍රණ යන්ත්‍රය හෝ බාහිර මුද්‍රණ යන්ත්‍රය.

රුධිර සෛලවල අධිෂ්ඨානශීලී දර්ශකවල නාමකරණය අනුව නවීන රක්තපාත විශ්ලේෂක වර්ගීකරණය කර ඇත.

පරාමිති අටකින් යුත් රක්තපාත විශ්ලේෂකපහත පරාමිතීන් තීරණය කරන්න: සාන්ද්රණය එරිත්රෝසයිට්(RBC) ලියුකෝසයිට්(WBC) පට්ටිකා(plt) hemoglobin(Hb), මෙන්ම පහත එරිත්‍රෝසයිට් පරාමිතීන්: මධ්‍යන්‍ය එරිත්‍රෝසයිට් පරිමාව (MCV), මධ්‍යන්‍ය එරිත්‍රෝසයිට් හිමොග්ලොබින් අන්තර්ගතය (MCH), මධ්‍ය එරිත්‍රෝසයිට් හිමොග්ලොබින් සාන්ද්‍රණය (MCHC), hematocrit(Hct).

පරාමිති අටකින් යුත් රක්තපාත විශ්ලේෂක වර්තමානයේ ප්රායෝගිකව නිෂ්පාදනය නොකෙරේ.

රක්තවේද විශ්ලේෂක පන්තිය 3-වෙනස. 3-dif පන්තියේ රක්තපාත විශ්ලේෂක, නිෂ්පාදනය කරන ලද ආකෘතිය අනුව, රුධිර සෛල දර්ශක 16 සිට 22 දක්වා තීරණය කිරීමට ඔබට ඉඩ සලසයි. මෙම පන්තියේ විශ්ලේෂකයින්, පරාමිති විශ්ලේෂක අටක් තීරණය කරන පරාමිතීන්ට අමතරව, ලියුකෝසයිට් වල උප ජනගහන තුනක් තීරණය කරයි: ලිම්ෆොසයිට් සාන්ද්‍රණය (Lm), granulocytes (Gr) සහ ඊනියා සාමාන්‍ය leukocytes (Mid), මෙන්ම ඔවුන්ගේ ප්‍රතිශතය Lm%, Gr% සහ මැද%. එබැවින් 3-dif පන්තියේ නම. මීට අමතරව, මෙම පන්තියේ රක්ත විශ්ලේෂක මගින් එරිත්‍රෝසයිට් පරිමාවේ (RDW) විචලනයේ සංගුණකය සහ පට්ටිකා සංලක්ෂිත දර්ශක ගණනාවක් තීරණය කරයි: සාමාන්‍ය පට්ටිකා පරිමාව (MPV), පට්ටිකා පරිමාවේ කොටස (Tct) (hematocrit හා සමානයි), පට්ටිකා පරිමාවේ විචලනයේ සංගුණකය (PDW).

මෙම පන්තියේ රක්තපාත විශ්ලේෂකයින් විසින් ලබා ගත හැකි වැදගත් රෝග විනිශ්චය තොරතුරු, erythrocytes, leukocytes සහ පට්ටිකා පරිමාව මගින් බෙදා හැරීමේ කාර්යයන් - histograms.

5-dif පන්තියේ රක්තපාත විශ්ලේෂක. 5-dif hematology විශ්ලේෂක සහ 3-dif විශ්ලේෂක අතර ඇති ප්‍රධාන වෙනස නම් leukocytes හි උප ජනගහන 5ම හඳුනා ගැනීමේ හැකියාවයි: ලිම්ෆොසයිට් (Lym), monocytes (Mon), neutrophils (Neu), basophils (Bas) සහ eosinophils (Eos), Lym%, Mon%, Neu%, Bas% සහ Eos% යන ඒවායේ ප්‍රතිශත අන්තර්ගතය. සම්බාධනය ගණනය කිරීමේ ක්‍රමය ලෙසද හැඳින්වේ කූල්ටර් කවුන්ටරය, 3-dif විශ්ලේෂකවල භාවිතා වේ, neutrophils, basophils සහ eosinophils අතර වෙනස හඳුනා ගැනීමට නොහැකි වේ, එබැවින්, 5-dif විශ්ලේෂකවල සෛල අවකලනය කිරීමේ වෙනස් ක්රමයක් භාවිතා කරයි. එය මූලධර්මය මත පදනම් වේ විවර්තනයලියුකෝසයිට් සෛල මත ලේසර් විකිරණ සහ විසිරුණු විකිරණ පිළිබඳ වැඩිදුර විශ්ලේෂණය. "සාමාන්‍ය" ලියුකෝසයිට් සම්බාධන ක්‍රමය මගින් වෙන්කර හඳුනාගත හැකි තරම් ප්‍රමාණයෙන් වෙනස් නොවේ, නමුත් ඒවාට වෙනස් අභ්‍යන්තර ව්‍යුහයක් ඇති අතර ඩයි වර්ග සමඟ වෙනස් ලෙස අන්තර්ක්‍රියා කරයි. විවර්තන රටාවක් හඳුනා ගැනීමේ ක්‍රමය සෛලවල අභ්‍යන්තර ව්‍යුහයට සංවේදී වේ. මේ අනුව, එරිත්රෝසයිට් සහ පට්ටිකා කෝල්ටර් කවුන්ටරයක් ​​මගින් ගණනය කරනු ලබන අතර, ලියුකෝසයිට් වෙනම ලේසර් ඒකකයක් මගින් ගණනය කරනු ලැබේ.

  • වැඩ 8. රුධිර සෙරුමය තුළ ප්රෝටීන් ප්රමාණාත්මක නිර්ණය කිරීම
  • 4. සංකීර්ණ ප්රෝටීන වල සංයුතිය සහ ගුණාංග
  • වැඩ 9. හෙම්ප්‍රෝටීන වල රසායනික ස්වභාවය
  • වැඩ 10. ග්ලයිකොප්‍රෝටීන වල කාබෝහයිඩ්‍රේට් සංරචකය හඳුනා ගැනීම
  • වැඩ 11. ෆොස්ෆොප්‍රෝටීන වලට ගුණාත්මක ප්‍රතික්‍රියා
  • වැඩ 12. හෙස් ක්‍රමය මගින් රුධිර සෙරුමයේ සියාලික් අම්ලවල අන්තර්ගතය ප්‍රමාණාත්මකව නිර්ණය කිරීම
  • වැඩ 13. නියුක්ලියෝප්‍රෝටීන වල රසායනික ස්වභාවය
  • න්යෂ්ටික අම්ල
  • 1. න්‍යෂ්ටික අම්ලවල රසායනික ස්වභාවය අධ්‍යයනය කිරීම
  • වැඩ 14. න්යෂ්ටික අම්ල සංරචක සඳහා ගුණාත්මක ප්රතික්රියා
  • න්යෂ්ටික අම්ල නිර්ණය කිරීම සඳහා ප්රමාණාත්මක ක්රම
  • වැඩ 15. A.S. Spirin අනුව න්යෂ්ටික අම්ලවල ප්රමාණාත්මක නිර්ණය සඳහා වර්ණාවලි ඡායාරූපමිතික ක්රමය
  • කාර්යය 16. න්යෂ්ටික අම්ලවල ප්රමාණාත්මක නිර්ණය සඳහා ඡායාරූප වර්ණමිතික ක්රම
  • වැඩ 17. ෆොස්ෆොලිපිඩ් අධ්යයනය
  • වැඩ 18. ස්ටෙරොයිඩ් සඳහා ගුණාත්මක ප්රතික්රියා
  • එන්සයිම
  • එන්සයිම සහ ජීව විද්‍යාත්මක නොවන උත්ප්‍රේරකවල සංසන්දනාත්මක ක්‍රියාව
  • වැඩ 19. පිෂ්ඨය ජල විච්ඡේදනයේ ප්‍රතික්‍රියාව මත කෙල සහ හයිඩ්‍රොක්ලෝරික් අම්ලයේ α-ඇමයිලේස් ක්‍රියාව සංසන්දනය කිරීම
  • 2. විවිධ පංතිවලට අයත් එන්සයිම හඳුනා ගැනීම
  • වැඩ 20. ජීව විද්යාත්මක ද්රව්යවල ඔක්සිඩෝඩෙක්ටේස් හඳුනා ගැනීම
  • වැඩ 21. cholinesterase හඳුනා ගැනීම
  • හර්ස්ෆෙල්ඩ් සහ ස්ටම්ප්ෆ්ගේ අධිවේගී ක්රමය මගින් රුධිර සෙරුමය තුළ
  • වැඩ 22. V.I. Tovarnitsky සහ E.N. Voluyskaya ක්රමයට අනුව රුධිර සෙරුමය තුළ ෆෲක්ටෝස්-1,6-බිස්පොස්පේට් ඇල්ඩොලේස් ක්රියාකාරිත්වය තීරණය කිරීම
  • ක්රමාංකන ප්රස්ථාරයක් ඉදි කිරීම
  • වැඩ 23. ග්ලූකෝස් පොස්පේට් සමාවයවික නිර්ණය කිරීම
  • රුධිර සෙරුමය තුළ
  • 3. එන්සයිමවල චාලක ගුණ අධ්‍යයනය කිරීම
  • වැඩ 24. කෙල α-ඇමයිලේස් උදාහරණය මත එන්සයිම ප්රතික්රියා වල චාලක
  • 4. එන්සයිම ක්රියාකාරිත්වයේ විශේෂත්වය
  • වැඩ 25. නිරපේක්ෂ උපස්ථර නිශ්චිතභාවය පෙන්නුම් කිරීම
  • 5. එන්සයිම ක්‍රියාකාරකම් වෙනස් කරන්නන්
  • වැඩ 27. ලවණ α-ඇමයිලේස් වල සක්රියකාරක සහ නිෂේධක
  • පේශි පටක
  • වැඩ 29. රුධිර කැටලේස් හි තරඟකාරී නොවන නිෂේධනය
  • 6. එන්සයිම ක්රියාකාරිත්වය ප්රමාණනය කිරීම
  • වැඩ 30. Kornberg අනුව ඖෂධ ලැක්ටේට් ඩිහයිඩ්රොජිනේස් ක්රියාකාරිත්වය පිළිබඳ ප්රමාණාත්මක අධ්යයනය
  • වැඩ 31. Sevel සහ Tovarek අනුව රුධිර සෙරුමය තුළ ලැක්ටේට් ඩිහයිඩ්‍රොජිනේස් ක්‍රියාකාරිත්වය අධ්‍යයනය කිරීම සඳහා ඡායා වර්ණමිතික ක්‍රමය
  • වැඩ 32. Bodansky අනුව රුධිර සෙරුමය තුළ ක්ෂාරීය පොස්පේටේස් ක්රියාකාරිත්වය තීරණය කිරීම
  • 7. isoenzymes අධ්‍යයනය
  • වැඩ 33. ඩයට්ස් සහ ලුබ්‍රානෝ අනුව පොලිඇක්‍රිලමයිඩ් ජෙල් වල ඉලෙක්ට්‍රෝෆොරේසිස් මගින් රුධිර සෙරුමයේ ලැක්ටේට් ඩිහයිඩ්‍රොජිනේස් අයිසොඑන්සයිම වෙන් කිරීම
  • වැඩ 34. රුධිර සෙරුමය තුළ γ-glutamyltransferase ක්‍රියාකාරිත්වය තීරණය කිරීම
  • ආහාර දිරවීමේ ජෛව රසායනය
  • වැඩ 35. ආමාශයික යුෂ වල ආම්ලික සංරචක අධ්යයනය කිරීම
  • වැඩ 36. "Acidotest" රෝග විනිශ්චය කට්ටලය සමඟ ආමාශයික යුෂ ආම්ලිකතාවය තීරණය කිරීම
  • වැඩ 37. ආහාර ජීර්ණ පත්රයේ එන්සයිම මගින් ප්රෝටීන් ජලවිච්ඡේදනය
  • වැඩ 38. අග්න්‍යාශයේ ලිපේස් ක්‍රියාකාරිත්වය යටතේ ට්‍රයිසයිල්ග්ලිසරෝල් ජල විච්ඡේදනයේ ගතිකත්වය අධ්‍යයනය කිරීම
  • බලශක්ති හුවමාරුව (ජෛව බලශක්තිය)
  • 1. සත්ව පටක වල ජීව විද්‍යාත්මක ඔක්සිකරණ ක්‍රියාවලි අධ්‍යයනය වැඩ 39. පේශි පටක වල සයිටොක්‍රොම් ඔක්සිඩේස් හඳුනා ගැනීම
  • වැඩ 40. ඔක්සිකාරක පොස්පරීකරණයේ ක්‍රියාවලිය සහ ඒ මත uncouplers ක්‍රියාව නිරූපණය කිරීම
  • වැඩ 41. මාංශ පේශි පටක වල ග්ලයිකොලිසිස් හඳුනා ගැනීම
  • කාර්යය 42. අයන හුවමාරු තුනී ස්ථර වර්ණදේහ මගින් ඇඩිනීන් නියුක්ලියෝටයිඩ විශ්ලේෂණය
  • වැඩ 43. Ennor සහ Rosenberg අනුව රුධිර සෙරුමය තුළ ක්‍රියේටීන් ෆොස්ෆොකිනේස් ක්‍රියාකාරිත්වය තීරණය කිරීම
  • ප්‍රභාසංස්ලේෂක ජීවීන්ගේ වර්ණක සහ ඔක්සිකාරක ක්‍රියාවලීන් විශ්ලේෂණය කිරීම
  • වැඩ 44. ශාක වර්ණක සඳහා ගුණාත්මක ප්රතික්රියා
  • වැඩ 45. A.N. බෝයාර්කින්ගේ ක්රමයට අනුව ශාක ද්රව්යවල පෙරොක්සිඩේස් ක්රියාකාරිත්වය නිර්ණය කිරීම
  • කාබෝහයිඩ්රේට් පරිවෘත්තීය
  • වැඩ 46. රුධිරයේ ග්ලූකෝස් තීරණය කිරීම
  • කාර්යය 47. ග්ලූකෝස් ඔක්සිඩේස් ක්රමය මගින් රුධිරයේ ග්ලූකෝස් ප්රමාණාත්මක නිර්ණය කිරීම
  • වැඩ 48. බාර්කර් සහ සමර්සන් අනුව රුධිරයේ ලැක්ටික් අම්ලයේ අන්තර්ගතය තීරණය කිරීම
  • වැඩ 49. ෆ්‍රීඩ්මන් සහ හෝගන් අනුව රුධිරයේ පයිරුවික් අම්ලයේ අන්තර්ගතය තීරණය කිරීම
  • ලිපිඩ පරිවෘත්තීය
  • වැඩ 50
  • වැඩ 51
  • වැඩ 52. Ilk ක්රමයට අනුව රුධිර සෙරුමය තුළ කොලෙස්ටරෝල් තීරණය කිරීම
  • වැඩ 53. රුධිර සෙරුමය තුළ සම්පූර්ණ ෆොස්ෆොලිපිඩ් වල අන්තර්ගතය තීරණය කිරීම
  • වැඩ 54. තුනී ස්ථරයක් වර්ණදේහ මගින් රුධිර සෙරුමය ලිපිඩ වෙන් කිරීම
  • ප්රෝටීන් සහ ඇමයිනෝ අම්ල පරිවෘත්තීය
  • වැඩ 55. turbidimetric ක්රමය මගින් රුධිර සෙරුමයේ ප්රෝටීන් කොටස්වල අන්තර්ගතය තීරණය කිරීම
  • වැඩ 56. A.A. Pokrovsky, A.I. Archakov සහ O.N අනුව රුධිර සෙරුමය තුළ කැටෙප්සින් වල ක්රියාකාරිත්වය නිර්ණය කිරීම.
  • කැතෙප්සින්
  • වැඩ 57. රීට්මන් සහ ෆ්‍රෙන්කල් අනුව රුධිර සෙරුමය තුළ ඇස්පාර්ටේට් සහ ඇලනින් ඇමයිනොට්‍රාන්ස්ෆෙරේස් ක්‍රියාකාරිත්වය තීරණය කිරීම
  • වැඩ 58. V.A විසින් වෙනස් කරන ලද Tabor සහ Mehler අනුව රුධිර සෙරුමය තුළ histidase ක්රියාකාරිත්වය නිර්ණය කිරීම.
  • වැඩ 59. නියුමන් සහ ලෝගන් අනුව මුත්රා වල නිදහස් හයිඩ්රොක්සිප්රොලීන් අන්තර්ගතය තීරණය කිරීම, p විසින් වෙනස් කරන ලදී.
  • නයිට්රජන් අඩංගු නොවන ප්රෝටීන් ද්රව්යවල පරිවෘත්තීය
  • 1. නයිට්රජන් පරිවෘත්තීය පොදු නිෂ්පාදන අධ්යයනය
  • කාර්යය 60. ප්‍රකාශ වර්ණමිතික ක්‍රමය මගින් රුධිරයේ අවශේෂ නයිට්‍රජන් ප්‍රමාණාත්මකව නිර්ණය කිරීම
  • වැඩ 61. රුධිර සෙරුමය සහ මුත්රා වල යූරියා ප්රමාණාත්මක නිර්ණය කිරීම
  • කාර්යය 62. බ්‍රවුන් ක්‍රමය මගින් ක්‍රියේටීන් සහ ක්‍රියේටිනින් ප්‍රමාණාත්මකව නිර්ණය කිරීම
  • 2. නියුක්ලික් අම්ල සහ නියුක්ලියෝටයිඩ හුවමාරුව පිළිබඳ අධ්‍යයනය
  • වැඩ 63. A.A අනුව රුධිර සෙරුමය තුළ අම්ල deoxyribonuclease (dnCase) ක්රියාකාරිත්වය නිර්ණය කිරීම.
  • වැඩ 64. මුලර් සහ සීෆර්ට්ගේ ක්‍රමයට අනුව රුධිර සෙරුමයේ යූරික් අම්ලයේ අන්තර්ගතය තීරණය කිරීම
  • 3. පෝර්ෆිරින් (වර්ණක) පරිවෘත්තීය අධ්යයනය
  • වැඩ 65. Yendrashik, Cleghorn සහ Grof අනුව රුධිර සෙරුමය තුළ bilirubin සහ එහි කොටස් නිර්ණය කිරීම
  • අණුක ව්යාධිවේදය
  • 1. ඇමයිනෝ අම්ල පරිවෘත්තීය ව්‍යාධි විද්‍යාව පිළිබඳ ප්‍රකාශිත රෝග විනිශ්චය වැඩ 66. හයිපර්මිනොඇසිඩියුරියා හඳුනා ගැනීම
  • වැඩ 67. phenylketonuria රෝග විනිශ්චය සඳහා ප්රකාශ ක්රම
  • වැඩ 68. ටයිරොසිනොසිස් රෝග විනිශ්චය ටයිරොසීන් සඳහා මිලොන් පරීක්ෂණය
  • වැඩ 69. homogentisic අම්ලය සඳහා පරීක්ෂණයකින් ඇල්කප්ටෝනුරියා හඳුනා ගැනීම
  • වැඩ 70
  • 2. කාබෝහයිඩ්‍රේට් පරිවෘත්තීය ව්‍යාධි පිළිබඳ ප්‍රකාශන රෝග විනිශ්චය වැඩ 71. Bial පරීක්ෂණයෙන් පෙන්ටෝසුරියා හඳුනා ගැනීම
  • වැඩ 72. සෙලිවානොව්ගේ පරීක්ෂණයෙන් ෆෲක්ටෝසුරියා හඳුනා ගැනීම
  • වැඩ 73. මුකොපොලිසැකරයිඩ සඳහා ටොලුයිඩින් නිල් සමඟ පරීක්ෂණයකින් මුකොපොලිසැකරයිඩෝස් හඳුනා ගැනීම
  • වැඩ 74. මුත්රා තුළ පෝර්ෆොබිලිනොජන් අන්තර්ගතය තීරණය කිරීම
  • වැඩ 75. මුත්රා වල ඩෙල්ටා-ඇමිනොලෙවුලිනික් අම්ලයේ අන්තර්ගතයේ ප්රමාණාත්මක නිර්ණය
  • වැඩ 76
  • පරිවෘත්තීය නියාමකයින්
  • 1. විටමින් වැඩ අධ්යයනය 77. විටමින් සඳහා ගුණාත්මක ප්රතික්රියා
  • වැඩ 78. මල්ටිවිටමින් සූදානමේ ෆ්ලෝරිමිතික ක්‍රමය මගින් තයමින් සහ රයිබොෆ්ලැවින් අන්තර්ගතය තීරණය කිරීම
  • වැඩ 79. ඖෂධීය ශාකවල ඇස්කෝර්බික් අම්ලය ප්රමාණාත්මකව නිර්ණය කිරීම
  • 2. හෝමෝන, මැදිහත්කරුවන් සහ ඒවායේ පරිවෘත්තීය පිළිබඳ අධ්‍යයනය
  • වැඩ 80. ප්රෝටීන්-පෙප්ටයිඩ හෝමෝන සඳහා ගුණාත්මක ප්රතික්රියා.
  • වැඩ 81. හෝමෝන සඳහා ගුණාත්මක ප්රතික්රියා - ඇමයිනෝ අම්ල ව්යුත්පන්න
  • වැඩ 82. ස්ටෙරොයිඩ් හෝමෝන සහ ඒවායේ පරිවෘත්තීය සඳහා ගුණාත්මක ප්රතික්රියා
  • වැඩ 83. සතුන්ගේ රුධිරයේ ග්ලූකෝස් ඉන්සියුලින් සහ ඇඩ්‍රිනලින් මට්ටම නියාමනය කිරීම
  • වැඩ 84. N.V. Klimkina සහ S.I. Plitman ට අනුව ඩයසෝටීකරණය කරන ලද n-nitroaniline සමඟ රුධිරයේ histamine ප්‍රමාණාත්මකව නිර්ණය කිරීම
  • ජීව විද්යාත්මක තරල අධ්යයනය
  • 1. ජෛව රසායනික රුධිර පරීක්ෂණ වැඩ 85. ආලෝකය අවශෝෂණය මගින් රුධිරයේ හිමොග්ලොබින් අන්තර්ගතය තීරණය කිරීම
  • වැඩ 86. මානව එරිත්රෝසයිට් වල කලලරූපී හීමොග්ලොබින් අන්තර්ගතය තීරණය කිරීම
  • වැඩ 87. ඡායාරූප වර්ණමිතික ක්‍රමය මගින් එරිත්‍රෝසයිට් වල ග්ලයිකෝසිලේටඩ් හීමොග්ලොබින් අන්තර්ගතය තීරණය කිරීම
  • කාර්යය 88. ප්‍රකාශ වර්ණමිතික ක්‍රමය මගින් රුධිර සෙරුමය තුළ හැප්ටොග්ලොබින් සාන්ද්‍රණය නිර්ණය කිරීම
  • වැඩ 89
  • වැඩ 90. ඇමයිලොක්ලාස්ටික් ක්‍රමය මගින් රුධිර සෙරුමයේ α-ඇමයිලේස් ක්‍රියාකාරිත්වය නිර්ණය කිරීම
  • වැඩ 91. මියුරෙක්සයිඩ් ක්රමය මගින් රුධිර සෙරුමය තුළ කැල්සියම් අන්තර්ගතය තීරණය කිරීම
  • වැඩ 92. Huergo සහ Popper අනුව Thymol පරීක්ෂණය
  • වැඩ 93. සබ්ලිමේට්-අවසාදිත ප්රතික්රියාව
  • වැඩ 94. රුධිර සෙරුමය තුළ යකඩ අන්තර්ගතය ප්රමාණාත්මකව තීරණය කිරීම
  • 2. මුත්රා පිළිබඳ ජෛව රසායනික අධ්යයනය
  • වැඩ 95. මුත්රා වල භෞතික රසායනික ගුණාංග අධ්යයනය කිරීම
  • වැඩ 96. කීටෝන සිරුරු සහ මුත්රා වල ග්ලූකෝස් නිර්ණය කිරීම
  • වැඩ 97. Brandenberg-Roberts-Stolnikov ක්රමය මගින් මුත්රා වල ප්රෝටීන් නිර්ණය කිරීම
  • වැඩ 98. මුත්රා තුළ ඉන්ඩිකන් වල ගුණාත්මක නිර්ණය
  • වැඩ 99. මුත්රා වල සමහර වර්ණක හඳුනා ගැනීම.
  • Xenobiotics පරිවෘත්තීය
  • Xenobiotics ඔක්සිකරණය සහ සංයෝජන ක්‍රියාවලීන් අධ්‍යයනය කිරීම වැඩ 100. ක්ෂුද්‍රසෝම වල ශ්වසන ක්‍රියාකාරකම් හෙළිදරව් කිරීම
  • වැඩ 101. අපගේ අනුව අක්මා මයික්‍රොසෝමවල ඔක්සිකාරක එන්-ඩිමෙතිලේෂන් අධ්‍යයනය
  • වැඩ 102. Kato සහ Gilet අනුව අක්මා මයික්‍රොසෝමවල හයිඩ්‍රොක්සිලේස් ක්‍රියාකාරිත්වය තීරණය කිරීම
  • රැකියා 103
  • වැඩ 104. Shkursky et al අනුව රුධිර සෙරුමය තුළ ඇල්කොහොල් ඩිහයිඩ්රොජිනේස් ක්රියාකාරිත්වය තීරණය කිරීම.
  • වැඩ 105
  • වැඩ 106. ශරීරයේ අයිසොනිකොටිනික් අම්ල හයිඩ්‍රසයිඩ් (ජින්ක්) ඇසිටිලේෂන් (අක්‍රිය කිරීම) හඳුනා ගැනීම
  • ජීව විද්යාත්මක පටලවල ලිපිඩ පෙරොක්සයිඩ් අධ්යයනය කිරීම
  • වැඩ 107. පෙරොක්සයිඩ් හීමොලිසිස් වලට එරිත්රෝසයිට් වල සංවේදීතාව තීරණය කිරීම
  • වැඩ 108. ජෛව පටලවල ලිපිඩ පෙරොක්සයිඩ් අනුපාතය තීරණය කිරීම
  • අයදුම්පත
  • 2.රුධිර ප්ලාස්මාවේ ජෛව රසායනික දර්ශක
  • 1. සාමාන්ය සායනික සම්මතයන්
  • 2. මුත්රා පිළිබඳ විශේෂ පරීක්ෂණය
  • ආමාශයික යුෂ
  • 2. පොස්පේට් බෆරය (0.1 m, pH 5.8-8.0)
  • 3. ට්‍රිස් බෆරය (මීටර් 0.1, pH 7.1-9.2)
  • 4. ඇසිටේට් බෆරය (0.2 m, pH 3.6-5.8)
  • 5. ග්ලයිසීන් බෆරය (මීටර් 0.05, pH අගය 8.6-10.6)
  • 3. සමහර ප්රතික්රියාකාරක සකස් කිරීම
  • අන්තර්ගත වගුව
  • 2. පොස්පේට් බෆරය (0.1 m, pH 5.8-8.0)

    Na 2 HPO 4 0.2 M, මිලි

    Na 2 H 2 PO 4 0.2 M, මිලි

    3. ට්‍රිස් බෆරය (මීටර් 0.1, pH 7.1-9.2)

    ට්‍රිස්-(හයිඩ්‍රොක්සිමීතයිල්) ඇමයිනොමෙතේන් ග්‍රෑම් 24.2 ක් 1 l පරිමාමිතික නළයක (H 2 O මිලි ලීටර් 500 ක) දියකරනු ලැබේ. අවශ්ය pH අගය ලබා ගැනීම සඳහා, වගුවේ දක්වා ඇති 1 M HCl පරිමාව එකතු කරනු ලබන අතර, ආස්රැත ජලය සමග පරිමාව 1000 ml දක්වා සකස් කරනු ලැබේ.

    4. ඇසිටේට් බෆරය (0.2 m, pH 3.6-5.8)

    සෝඩියම් ඇසිටේට් 0.2 M, මිලි

    ඇසිටික් අම්ලය 0.2 M, මිලි

    සෝඩියම් ඇසිටේට් 0.2 M, මිලි

    ඇසිටික් අම්ලය 0.2 M, මිලි

    5. ග්ලයිසීන් බෆරය (මීටර් 0.05, pH අගය 8.6-10.6)

    ග්ලයිසීන් සහ සෝඩියම් හයිඩ්‍රොක්සයිඩ් වල දක්වා ඇති පරිමාව මිශ්‍ර කර ඇති අතර පරිමාව ආසවනය කළ ජලය සමඟ මිලි ලීටර් 200 දක්වා සකස් කරනු ලැබේ.

    Glycine 0.2 M, ml

    NaOH 0.2 M, මිලි

    Glycine 0.2 M, ml

    NaOH 0.2 M, මිලි

    3. සමහර ප්රතික්රියාකාරක සකස් කිරීම

    විසඳුම සක්රිය කිරීම. අඩු කරන ලද ග්ලූටතයෝන් මිලිග්‍රෑම් 155 ක් සහ ස්ඵටිකරූපී ඇල්බියුමින් මිලිග්‍රෑම් 400 ක් මිලි ලීටර් 100 ක ධාරිතාවක් සහිත පරිමාමිතික නළයක තබා, ඒවා ආස්රැත ජලය මිලි ලීටර් 50 ක දියකර 1 M NaOH ද්‍රාවණයක් භාවිතයෙන් pH අගය 8.2 දක්වා සකස් කරනු ලැබේ. ඉන්පසු ලකුණට ජලය එකතු කරන්න.

    රිදී නයිට්රේට් ඇමෝනියා ද්රාවණය. ඇමෝනියා සාන්ද්‍රිත ද්‍රාවණයක් 2-3% රිදී ද්‍රාවණයකට අවක්ෂේපය දියවන තෙක් එකතු කරනු ලැබේ.

    ඇසිටේට් බෆරය pH අගය 3.6. ද්‍රාවණය A මිලි ලීටර් 463 ක් සහ බී ද්‍රාවණය මිලි ලීටර් 37 ක් මිශ්‍ර කිරීමෙන් සකස් කරන්න, පරිමාමිතික නළයක ජලය ලීටර් 1 දක්වා තනුක කරන්න. විසඳුම A: ග්ලැසියර ඇසිටික් අම්ලය මිලි ලීටර් 11.55 ක් ජලය සමග ලීටර් 1 පරිමාමිතික නළයක තනුක කරන්න. විසඳුම B: සෝඩියම් ඇසිටේට් ග්රෑම් 27.2 ක් ලීටර් 1 ක බෝතලයක ජලයේ දියකරන්න.

    බියුරෙට් ප්‍රතික්‍රියාකාරකය (බෙනඩික්ට් ප්‍රතික්‍රියාකාරකය). සෝඩියම් සයිටේ්රට් ග්රෑම් 173 ක් සහ සෝඩියම් කාබනේට් ග්රෑම් 100 ක් ජල ස්නානයක ආස්රැත ජලය මිලි ලීටර් 300 ක් තුළ විසුරුවා හරිනු ලැබේ. වෙනමම, තඹ සල්ෆේට් ග්රෑම් 17.3 ක් ජලය මිලි ලීටර් 300 ක් තුළ විසුරුවා හරිනු ලැබේ. විසඳුම් දෙකම ජලය බැස යන අතර සම්පූර්ණ පරිමාව ලීටර් 1 දක්වා ගෙන එනු ලැබේ.

    බෆර් විසඳුම. වෙරෝනල් ග්‍රෑම් 2.76 ක් සහ මෙඩිනල් ග්‍රෑම් 2.06 ක් ආස්රැත ජලය ලීටර් 1 ක විසුරුවා හරිනු ලැබේ. ශීතකරණයක් තුළ ගබඩා කරන්න; වර්ෂාපතනයක් දිස්වන්නේ නම්, විසඳුම භාවිතයට සුදුසු නොවේ.

    ගල් අඟුරු අත්හිටුවීම. සක්‍රිය අඟුරු ග්‍රෑම් 0.25 ක් මිලි ලීටර් 100 පරිමාමිතික නළයක තබා ඇසිටේට් බෆර pH 3.6 සමඟ තනුක කර ඇත. භාවිතයට පෙර හොඳින් සොලවන්න.

    ප්රතික්රියාකාරකය අඩු කිරීම. 0.016% තඹ සල්ෆේට් ද්‍රාවණයකින් සකස් කරන ලද ඇස්කෝර්බික් අම්ලයේ 1% ද්‍රාවණය.

    හිමොග්ලොබින්, ඇසිටේට් බෆරයේ 4% ද්‍රාවණය (pH 4.0). පළමුව, 8% හීමොග්ලොබින් ද්‍රාවණයක් 8 mol/l යූරියා ද්‍රාවණයකින් සකස් කර, 60 ° C දී තාප ස්ථායයක පැය 2 ක් තබා, භාවිතයට පෙර ඇසිටේට් බෆරය සමඟ 2 වතාවක් තනුක කරනු ලැබේ.

    Glycyl-glycine. 0.55 mmol/l, pH 8.3. glycyl-glycine ග්‍රෑම් 3.63 ක් මිලි ලීටර් 50 පරිමාමිතික නළයක තබා ඇති අතර, එය සලකුණට (බෆර ද්‍රාවණය) ජලය සමග ඉහළට දමා ඇත.

    නිෂේධනීය විසඳුම

    බිලිරුබින් නිර්ණය කිරීම සඳහා ඩයසෝ ප්රතික්රියාකාරකය. විසඳුම් දෙකක් සකස් කරන්න. පළමු විසඳුම: සල්ෆනිලික් අම්ලය ග්රෑම් 3 ක් ආස්රැත ජලය මිලි ලීටර් 500 ක් තුළ විසුරුවා හරිනු ලැබේ, සාන්ද්ර හයිඩ්රොක්ලෝරික් අම්ලය මිලි ලීටර් 15 ක් එකතු කරනු ලැබේ (උණුසුම් ස්නානයක දී), පරිමාව ජලය සමග ලීටර් 1 දක්වා සකස් කර ඇත. දෙවන විසඳුම: 0.5% ජලීය සෝඩියම් නයිට්රයිට් ද්රාවණය. භාවිතයට පෙර, පළමු විසඳුම මිලි ලීටර් 5 ක් සහ දෙවන මිලි ලීටර් 0.25 ක් මිශ්ර කරන්න.

    ඩයසිටයිල්, වැඩ කරන විසඳුම. ඩයසිටයිල් මිලි ලීටර් 1 ක් ආස්රැත ජලය සමග මිලි ලීටර් 100 පරිමාමිතික නළයක තනුක කර ඇත (ද්රාවණය ශීතකරණය තුළ ගබඩා කර ඇත). ඩයසිටයිල් හි වැඩ කරන ද්‍රාවණය භාවිතයට පෙර සකස් කර ඇත්තේ ආස්රැත ජලය මිලි ලීටර් 24 ක් ඩයසිටයිල් තොග ද්‍රාවණයේ මිලි ලීටර් 1 කට එකතු කිරීමෙනි.

    ඩිෆෙනයිලමයින් ප්‍රතික්‍රියාකාරකය. ග්ලැසියර ඇසිටික් අම්ලය මිලි ලීටර් 100 ක් තුළ ඩිෆෙනයිලමයින් ග්රෑම් 1 ක් විසුරුවා හරිනු ලැබේ. විසඳුම සඳහා සාන්ද්ර සල්ෆියුරික් අම්ලය මිලි ලීටර් 2.75 ක් එකතු වේ.

    ක්රමාංකන විසඳුම. මූලික - 0.75 mmol/l ALA (100 µg/ml) පදනම අනුව: ALA හයිඩ්‍රොක්ලෝරයිඩ් 0.00635 g ඇසිටේට් බෆර pH 3.6 හි 50 ml පරිමාමිතික නළයක විසුරුවා හරිනු ලැබේ. මාසයකට නොඅඩු ශීතකරණයක් තුළ ගබඩා කරන්න. වැඩ කරන ක්රමාංකන විසඳුමක් ප්රධාන විසඳුම, 1 μg / ml වලින් සකස් කර ඇත. ඇසිටේට් බෆරය සමඟ කොටස් ද්‍රාවණය 100 වතාවක් තනුක කිරීමෙන් භාවිතයට පෙර සූදානම් කරන්න.

    ක්රමාංකන විසඳුම. ඩයිහයිඩ්‍රොක්සිසෙටෝන් මිලිග්‍රෑම් 22.5 ක් උණු කිරීමත් සමඟ ජලය මිලි ලීටර් 25 ක් තුළ දිය වේ. මෙම ද්‍රාවණයේ මිලි ලීටර් 1 ක ඩයිහයිඩ්‍රොක්සිසෙටෝන් 10 μmole අඩංගු වේ. ඩයිහයිඩ්‍රොක්සිඇසිටෝන් ක්‍රමාංකන ද්‍රාවණයක් පරීක්ෂණ නල ගණනාවකට වත් කරනු ලැබේ (වැඩ බලන්න), අවශ්‍ය පරිමාව දක්වා ඉහළට, පසුව ප්‍රතික්‍රියාව එන්සයිමයේ ක්‍රියාකාරිත්වය තීරණය කරන ආකාරයටම සිදු කෙරේ.

    ක්‍රමාංකන (සම්මත) යකඩ ද්‍රාවණය (30 µmol/l).

    මෝරා ලුණු මුලින්ම සකස් කර ඇත.

    කැෆේන් ප්රතික්රියාකාරකය. පිරිසිදු කැෆේන් ග්‍රෑම් 1 ක්, සෝඩියම් බෙන්සොයිට් ග්‍රෑම් 7.5 ක්, සෝඩියම් ඇසිටේට් ග්‍රෑම් 12.5 ක් ආස්රැත ජලය මිලි ලීටර් 90 ක දියකර, 50-60 ° C දක්වා රත් කර, කලවම් කර, සිසිල් කර, ආස්රැත ජලය සමග මිලි ලීටර් 100 දක්වා සාදා ඇත.

    නයිට්‍රික් අම්ලයේ ඇමෝනියම් මොලිබ්ඩේට්. ඇමෝනියම් මොලිබ්ඩේට් ග්රෑම් 7.5 ක් ජලය මිලි ලීටර් 100 ක් තුළ විසුරුවා හරින අතර 32% නයිට්රික් අම්ලය මිලි ලීටර් 100 ක් එකතු කරනු ලැබේ.

    ඇල්කප්ටෝනූරියා සඳහා මුත්රා. ව්යාධිජනක නොමැති විට, හයිඩ්රොක්විනෝන් 20 g / l අනුපාතයකින් සාමාන්ය මුත්රා වලට එකතු වේ.

    Hyperaminoaciduria සමග මුත්රා. ව්යාධිජනක ග්ලයිසීන් නොමැති විට සාමාන්ය මුත්රා වලට 1.0 g / l අනුපාතයකින් එකතු වේ.

    මුකොපොලිසැකරයිඩෝසිස් සමඟ මුත්රා. ව්යාධිජනක නොමැති විට, chonsuride හෝ heparin 0.05-0.1 g / l අනුපාතයකින් සාමාන්ය මුත්රා වලට එකතු වේ.

    පෙන්ටෝසුරියා සමඟ මුත්රා. ව්යාධිජනක නොමැති විට, සයිලුලෝස් හෝ රයිබෝස් 1.0 g / l අනුපාතයකින් මුත්රා වලට එකතු වේ.

    ටයිරොසිනෝසිස් සමඟ මුත්රා. ව්යාධිජනක නොමැති විට, ටයිරොසීන් සාමාන්ය මුත්රා වලට 0.4-0.5 g / l අනුපාතයකින් එකතු වේ.

    ෆෲක්ටෝසුරියා සමඟ මුත්රා. ව්යාධිජනක නොමැති විට, ෆෲක්ටෝස් 0.3-0.4 g / l අනුපාතයකින් සාමාන්ය මුත්රා වලට එකතු වේ.

    සිස්ටිනුරියා සඳහා මුත්රා. ව්යාධිජනක සිස්ටීන් නොමැති විට 0.4-0.5 g / l අනුපාතයකින් සාමාන්ය මුත්රා වලට එකතු වේ.

    සෝඩියම් ඇසිටේට් 3-ජල, සංතෘප්ත ද්රාවණය. සෝඩියම් ඇසිටේට් 3-ජලීය (හෝ නිර්ජලීය ලුණු ග්‍රෑම් 226) 375 ග්රෑම් උණුසුම් ජලය මිලි ලීටර් 250 ක දියකර කාමර උෂ්ණත්වයට සිසිල් කරනු ලැබේ. කාමර උෂ්ණත්වයේ ගබඩා කරන්න. විසඳුම අවර්ණ සහ විනිවිද පෙනෙන විය යුතුය.

    සෝඩියම් පොස්පේට් 0.25 mol/l විසංයෝජනය කර ඇත. 9.7 g Na 2 HPO 4 ∙12H 2 O හෝ 18 g Na 2 HPO 4 ∙12H 2 O මිලි ලීටර් 200 කුප්පියක ජලයේ දියකර සකස් කරන්න. ට්‍රයික්ලෝරෝඇසිටික් අම්ල ද්‍රාවණය මිලි ලීටර් 1 කට මෙම ද්‍රාවණයෙන් මිලි ලීටර් 2 ක් එකතු කරන විට, pH අගය 5.0-6.0 අතර විය යුතුය.

    Creatinine මූලික ක්රමාංකන විසඳුම, 10 mmol / l. ක්‍රියේටිනින් 113.1 mg 0.1 mol / l හයිඩ්‍රොක්ලෝරික් අම්ල ද්‍රාවණය සමඟ මිලි ලීටර් 100 දක්වා සකස් කර ඇත. ක්‍රමාංකන ප්‍රස්ථාරයක් තැනීමේදී, කොටස් ද්‍රාවණය 100 වතාවක් ජලය සමග තනුක කිරීමෙන් කොටස් ද්‍රාවණයෙන් වැඩ කරන ද්‍රාවණයක් සකස් කරනු ලැබේ, ද්‍රාවණයේ මිලි ලීටර් 1 ක් ක්‍රියේටිනින් 0.1 mmol අඩංගු වේ. මේ මත පදනම්ව, ක්‍රියේටීන් අනුරූප සාන්ද්‍රණයන් සමඟ පරීක්ෂණ නල ගණනාවක් ලබා ගනී.

    තයමින් තීරණය කිරීම සඳහා ඔක්සිකාරක මිශ්රණය. 1% පොටෑසියම් hexacyanoferrate (III) මිලි ලීටර් 8 ට 30% NaOH ද්‍රාවණයෙන් මිලි ලීටර් 20 ක් එකතු කර තරයේ මිශ්‍ර කරන්න. භාවිතයට පෙර සූදානම් කරන්න.

    ඔර්සීන් ප්රතික්රියාකාරකය. orcin ග්රෑම් 1 ට 30% හයිඩ්රොක්ලෝරික් අම්ලය මිලි ලීටර් 500 ක් (ඝනත්වය 1.15 g / cm 3) එකතු කරන්න. ද්රාවණය වන තෙක් බීට් කර 10% යකඩ ක්ලෝරයිඩ් ද්රාවණ (III) FeCl 3 මිලි ලීටර් 4-5 ක් එකතු කරන්න. ප්‍රතික්‍රියාකාරකය තදින් වසා ඇති අඳුරු බෝතලයක ගබඩා කර ඇත.

    p-nitroaniline මූලික ක්රමාංකන විසඳුම. p-nitroaniline ග්‍රෑම් 0.0829 ක් මිලිලීටර් 100 පරිමාමිතික ප්ලාස්ක් එකක තැන්පත් කර ඇති අතර එය ජලය සමග සලකුණ දක්වා සාදා විසුරුවා හරිනු ලැබේ.

    වර්ෂාපතන විසඳුම. ඇමෝනියම් සල්ෆේට් ග්රෑම් 561 ක් ආස්රැත ජලය ලීටර් 1 ක දියකර පැය 24 කට පසු පෙරීම.

    මූලික පොස්පේට් බෆර ද්රාවණය සහ එහි ක්රියාකාරී විසඳුම් අංක 1-4. මිලි ලීටර් 500 ක ධාරිතාවක් සහිත පරිමාමිතික නළයක ජලය මිලි ලීටර් 400 ක NaOH ග්රෑම් 33.5 ක් විසුරුවා හැර KH 2 PO 4 ග්රෑම් 226.8 ක් එකතු කරන්න, සම්පූර්ණයෙන්ම විසුරුවා හරින තෙක් සොලවා, සිසිල් කර ලකුණට ජලය එකතු කරන්න. මූලික පොස්පේට් බෆරයේ වැඩ විසඳුම් සකස් කිරීම සඳහා, මූලික පොස්පේට් බෆරයේ (මිලි ලීටර් වලින්) පහත වෙළුම් මිලි ලීටර් 100 ක ධාරිතාවකින් යුත් පරිමාමිතික ප්ලාස්ක් වලට මනිනු ලැබේ: අංක 1 - 92.51; අංක 2 - 74.91; අංක 3 - 59.18 සහ අංක 4 - 48.68, ඉන් පසුව ඒවායේ අන්තර්ගතය ජලය සමග ලකුණට ගෙන එනු ලැබේ.

    පික්රික් අම්ලය, සංතෘප්ත ද්රාවණය. භාණ්ඩ picric අම්ලය 15-20% තෙතමනය අඩංගු වේ, අම්ලය වියළන්න එපා. පුපුරන සුලු! උණුසුම් ස්නානයක රත් කිරීමෙන් ජලය මිලි ලීටර් 100 ක් තුළ පික්රික් අම්ලය ග්රෑම් 2 ක් විසුරුවා හරින්න. ඊට පසු, විසඳුම ඉඳහිට ඇවිස්සීමත්, පැය 24 ක් රැඳී සිටීමට ඉතිරි වේ. එවිට විසඳුම පෙරීම සිදු කරයි. විසඳුම ස්ථායී වන අතර අඳුරු වීදුරු භාජනයක ගබඩා කර ඇත.

    පයිරොපොස්පේට් බෆරය 0.05 M pH 8.2. සෝඩියම් පයිරොපොස්පේට් ග්‍රෑම් 4.46 ක් මිලි ලීටර් 200 පරිමාමිතික නළයකට මාරු කර, එය වතුර මිලි ලීටර් 100 ක පමණ දියකර, 0.1 M HCl ද්‍රාවණයකින් pH අගය 8.2 ට සකසන්න සහ ආස්රැත ජලය සමඟ ලකුණට ඉහළට දමන්න.

    පයිරොපොස්පේට් බෆරය 0.1 M pH 8.5. සෝඩියම් පයිරොපොස්පේට් ග්‍රෑම් 4.46 ක් මිලි ලීටර් 100 ක ධාරිතාවක් සහිත පරිමාමිතික නළයකට මාරු කර, එය ජලය මිලි ලීටර් 50 ක දියකර, 0.1 M HCl ද්‍රාවණයක් සමඟ pH අගය 8.5 ට සකසා ආස්රැත ජලය ලකුණට එක් කරන්න.

    වැඩ කරන ප්රතික්රියාකාරකය. 0.3 N සෝඩියම් හයිඩ්‍රොක්සයිඩ් කොටස් 30 ක් මිශ්‍ර කර නිර්ණය කරන දිනයේ සූදානම් කරන්න. 2 කොටස් 0.5% phenolphthalein ද්‍රාවණය සහ 1 කොටස 0.12% තඹ සල්ෆේට් ද්‍රාවණය.

    ඇසිටෝන් සයනොහයිඩ්‍රින් ද්‍රාවණය. ඇසිටෝන් සයනොහයිඩ්‍රින් ඇම්පියුලර් 1 ක් (රුධිරයේ හීමොග්ලොබින් තීරණය කිරීම සඳහා කට්ටලයෙන් 0.5 ml - 0.47 ග්රෑම්) ආස්රැත ජලය ලීටර් 1 ක විසුරුවා හරින්න.

    Ferriacetone cyanohydrin ද්‍රාවණය. පොටෑසියම් ෆෙරිසියනයිඩ් මිලිග්‍රෑම් 200 ක් සහ ඇසිටෝන් සයනොහයිඩ්‍රින් ඇසිටෝන් සයනොහයිඩ්‍රින් මිලිග්‍රෑම් 200 ක් විසුරුවා හරින්න: රුධිර හිමොග්ලොබින් තීරණය කිරීම සඳහා පරිවර්තන ද්‍රාවණයක් සකස් කිරීම සඳහා ප්‍රතික්‍රියාකාරක කට්ටලයකින් භාවිතා කළ හැකිය. කාමර උෂ්ණත්වයේ දී අඳුරු වීදුරු බඳුනක ගබඩා කර ඇති විට මාස කිහිපයක් සඳහා ස්ථාවර වේ.

    Gluoxidase විසඳුම. ඒකක 300 ක් පමණ අඩංගු වේ. 1 mg තුළ. වතුර මිලි ලීටර් 10 ක වියළි සූදානමක සුදුසු ප්රමාණය විසුරුවා හැරීමෙන් සකස් කරන්න.

    සල්ෆනේටඩ් බැටෝ-ෆෙනන්ත්‍රොලයින් ද්‍රාවණයකි. පරීක්ෂණ නළයක, ක්ලෝරෝසල්ෆොනික් අම්ලය මිලි ලීටර් 0.5 ක් බාත්ෆෙනැන්ත්‍රොලයින් මිලිග්‍රෑම් 100 කට එකතු කර, තත්පර 30 ක් උතුරන ජල ස්නානයක රත් කර, සිසිල් කර, බිඩිස්ටිල් කළ ජලය මිලි ලීටර් 10 ක් සෙමින් එකතු කර, විනාඩි 5 ක් ජල ස්නානයක නැවත රත් කරනු ලැබේ. මිශ්රණය 200 ml ප්ලාස්ක් වෙත මාරු කරනු ලැබේ, ජලය මිලි ලීටර් 100 ක් එකතු කරනු ලැබේ, විසඳුමේ pH අගය 4-5 N NaOH දක්වා සකස් කර ඇති අතර ජලය මිලි ලීටර් 200 ක පරිමාවකට එකතු වේ.

    පොටෑසියම් අයඩයිඩ් වල අයඩින් ද්‍රාවණය (ලුගෝල් ද්‍රාවණය). ආස්රැත ජලය මිලි ලීටර් 100 ක පොටෑසියම් අයඩයිඩ් ග්රෑම් 20 ක් සහ අයඩින් ග්රෑම් 10 ක් විසුරුවා හරින්න. භාවිතයට පෙර, විසඳුම 5 වතාවක් තනුක කර ඇත.

    p-nitrosodimethylaniline (NDMA) ද්‍රාවණය. වාණිජමය වශයෙන් ලබා ගත හැකි NDMA සූදානමක් එතිල් ඊතර් වලින් නැවත ස්ඵටිකීකරණය කර ඇත. ඇල්කොහොල් ඩිහයිඩ්‍රොජිනේස් මැනීම සඳහා, NDMA මිලිග්‍රෑම් 1 ක් 0.1 M pyrophosphate බෆරයේ (pH 8.5) මිලි ලීටර් 100 ක් තුළ විසුරුවා හරිනු ලැබේ. ප්රතිඵලයක් වශයෙන් විසඳුම කඩදාසි ෆිල්ටරයක් ​​හරහා පෙරා ඇති අතර එම බෆරය සමඟ 2 වරක් පෙරීම තනුක කර ඇත. මාස දෙකක් සඳහා 4 ° C දී ගබඩා කරන්න.

    ඉල්කාගේ ප්රතික්රියාකාරකය. ඇසිටික් ඇන්හයිඩ්‍රයිඩ් කොටස් 5 කට (පරිමාව අනුව), ග්ලැසියර ඇසිටික් අම්ලයේ 1 කොටස එකතු කරන්න, ඉන්පසු ක්‍රමයෙන් සාන්ද්‍ර සල්ෆියුරික් අම්ලයේ 1 කොටස වත් කරන්න. ප්රතික්රියක සීතල තුළ ගබඩා කරන්න!

    මිලොන් ප්රතික්රියාකාරකය. (පීඩනය යටතේ සූදානම්! ) රසදිය ග්‍රෑම් 40 ක් සාන්ද්‍ර නයිට්‍රික් අම්ලය මිලි ලීටර් 57 ක විසුරුවා හරිනු ලැබේ, පළමුව සීතල තුළ, පසුව ජල ස්නානයක රත් කරනු ලැබේ. ප්රතිඵලයක් වශයෙන් ද්රාවණය ජල පරිමාවන් 2 ක් සමග තනුක කර, පදිංචි වීමට ඉඩ දී අවසාදිතයෙන් ඉවත් කරනු ලැබේ. අඳුරු වීදුරු බෝතලයක ගබඩා කරන්න.

    ඇමෝනියම් molybdate ප්රතික්රියාකාරකය. ඇමෝනියම් මොලිබ්ඩේට් ග්‍රෑම් 2.5 ක් පෙරන ලද ආස්රැත ජලය මිලි ලීටර් 60 ක විසුරුවා හරිනු ලැබේ. විසඳුම මිලි ලීටර් 100 ක බෝතලයකට එකතු වේ. තවත් බෝතලයක, සාන්ද්‍ර සල්ෆියුරික් අම්ලය මිලි ලීටර් 7.5 ක් ආස්රැත ජලය මිලි ලීටර් 25 කට එකතු කරනු ලැබේ. දෙවන විසඳුම පළමු එකට එකතු කර, සලකුණට ආස්රැත ජලය සමග සිසිල් කර තනුක කර ඇත. විසඳුම මාසයක් සඳහා සුදුසු වේ.

    ප්රතික්රියාකාරක "NADI". ඩයිමීතයිල්-පී-ෆීනයිලෙනෙඩියමයින් 1% ද්‍රාවණයක් ඇල්කොහොල් වල α-නැෆ්තෝල් 1% ද්‍රාවණයක සමාන පරිමාවක් සහ 1.5% සෝඩියම් කාබනේට් ද්‍රාවණයක් සමඟ මිශ්‍ර කර ඇත. විසඳුම තද දුඹුරු පැහැයෙන් යුක්ත වන අතර රෝස පැහැති තින්ක් නොතිබිය යුතුය. පන්තියට පැය 1 කට පෙර සූදානම් විය.

    ප්රතික්රියාකාරක නාෂා. ඇමෝනියම් ඇසිටේට් ග්රෑම් 15.4 ක්, ග්ලැසියර ඇසිටික් අම්ලය ග්රෑම් 0.3 ක් සහ ඇසිටිලැසෙටෝන් ග්රෑම් 0.2 ක් මිලි ලීටර් 100 ක ධාරිතාවක් සහිත භාජනයකට එකතු කර ආසවනය කළ ජලයේ දිය කර පරිමාව සලකුණට ගැලපේ.

    නෙස්ලර්ගේ ප්‍රතික්‍රියාකාරකය. මිලි ලීටර් 500 ක ධාරිතාවක් සහිත පරිමාමිතික නළයක, පොටෑසියම් අයඩයිඩ් ග්‍රෑම් 150 ක්, අයඩින් ග්‍රෑම් 110 ක්, ආස්රැත ජලය මිලි ලීටර් 100 ක් සහ ලෝහ රසදිය ග්‍රෑම් 140-150 ක් පමණ මිශ්‍ර කර විනාඩි 15 ක් දැඩි ලෙස සොලවනු ලැබේ. මෙම අවස්ථාවේ දී, විසඳුම ස්වයංසිද්ධව උණුසුම් වන අතර, විසුරුවා හරින ලද අයඩින් නිසා වර්ණය ක්රමයෙන් සුදුමැලි වේ. පසුව මිශ්‍රණය ගලා යන ජලය යටතේ පැහැදිලි රතු පැහැයක් පවතින තෙක් සිසිල් කරනු ලැබේ, ඉන්පසු රතු පැහැය කොළ පැහැයට හැරෙන තෙක් අන්තර්ගතය සොලවනු ලැබේ. decantation පසු, රසදිය අවක්ෂේපය ජලය සමග හොඳින් සෝදා ඇත. විසඳුම සහ සේදීම ඒකාබද්ධ කරන්න, ලීටර් 2 දක්වා ජලය සමග ඔවුන් තනුක. ජලය මිලි ලීටර් 75 ක් සහ 10% සෝඩියම් හයිඩ්‍රොක්සයිඩ් ද්‍රාවණයෙන් මිලි ලීටර් 350 ක් අඩංගු ලීටර් 0.5 පරිමාමිතික නළයකට ප්‍රති result ලයෙන් ද්‍රාවණයෙන් මිලි ලීටර් 75 ක් ගෙන ලකුණට ජලය සමග තනුක කරන්න.

    Fehling ගේ ප්රතික්රියාකාරකය. විසඳුම් දෙකක් වෙන වෙනම සකස් කර ඇත. විසඳුම 1: රොෂෙල්ගේ ලුණු ග්‍රෑම් 200 ක් සහ NaOH ග්‍රෑම් 150 ක් ලීටර් 1 පරිමාමිතික නළයක දියකර ජලය සමඟ සලකුණට තනුක කරන්න. විසඳුම 2: ලීටර් 1 ක ධාරිතාවක් සහිත පරිමාමිතික නළයක, තඹ (II) සල්ෆේට් ග්රෑම් 40 ක් ජලයේ දිය කර සලකුණට ජලය සමග තනුක කරන්න. භාවිතයට පෙර මෙම විසඳුම් සමාන පරිමාවක් මිශ්ර කරන්න.

    ෆෝලින්ගේ ප්රතික්රියාකාරකය. ලීටර් 1 ක බෝතලයක සෝඩියම් ටංස්ටේට් ග්‍රෑම් 1 ක් සහ පොස්ෆොමොලිබ්ඩික් අම්ලය ග්‍රෑම් 20 ක් වතුර මිලි ලීටර් 750 ක් තුළ විසුරුවා හරින්න. ප්‍රත්‍යාවර්ත සිසිලනකාරකයක් සහිත නැවතුමකින් නළය වසා දමා, ශීතකරණයේ ජල ප්‍රවාහය සක්‍රිය කිරීමෙන්, අන්තර්ගතය පැය 10 ක් තම්බා ඇත; පසුව එය සිසිල් කර පරිමාමිතික නළයකට වත් කර ප්‍රතික්‍රියාකාරකයේ ජලීය පරිමාව ලීටර් 1 දක්වා සකස් කරනු ලැබේ.

    අර්ලිච්ගේ ප්‍රතික්‍රියාකාරකය. p-dimethylaminobenzaldehyde ග්රෑම් 0.7 ක් සාන්ද්ර හයිඩ්රොක්ලෝරික් අම්ලය මිලි ලීටර් 150 ක් තුළ විසුරුවා හැර, ජලය මිලි ලීටර් 100 කට එකතු කර මිශ්ර කර ඇත. විසඳුම අවර්ණ හෝ තරමක් කහ විය යුතුය. අඳුරු වීදුරු භාජනයක ගබඩා කරන්න. ප්රතික්රියාකාරකය ස්ථායී වේ.

    අර්ලිච්ගේ ප්‍රතික්‍රියාකාරකය. ග්ලැසියර ඇසිටික් අම්ලය මිලි ලීටර් 35 ක් තුළ p-dimethylaminobenzaldehyde ග්රෑම් 1 ක් දියකර, ග්ලැසියර ඇසිටික් අම්ලය මිලි ලීටර් 8 ක් එකතු කර ග්ලැසියර ඇසිටික් අම්ලය සමඟ ලකුණු කරන්න. අඳුරු වීදුරු භාජනයක සතියක් දක්වා ශීතකරණයක් තුළ ගබඩා කරන්න.

    තයිමෝල් ඇල්කොහොල් ද්‍රාවණය (10%). පිරිසිදු තයිමෝල් ග්‍රෑම් 10 ක් 96˚ එතිල් මධ්‍යසාර මිලි ලීටර් 100 ක දියකරනු ලැබේ. පිරිසිදු තයිමෝල් ලබා ගැනීම පහත පරිදි සිදු කෙරේ. තයිමෝල් ග්‍රෑම් 100 ක් 96˚ එතිල් මධ්‍යසාර මිලි ලීටර් 100 ක දියකර පෙරීම සිදු කරයි. පෙරීමට සීතල ආසවනය කළ ජලය ලීටර් 1 ක් එකතු කරන්න, දැඩි ලෙස සොලවා විනාඩි 20 ක් රැඳී සිටින්න. ෆිල්ටරය පෙරහන කර ඇති අතර පෙරහන මත ඉතිරිව ඇති ස්ඵටික සීතල ආස්රැත ජලය සමග දෙවරක් සෝදා ඇත. පළමුව පෙරහන් කඩදාසි මත වියළන්න, පසුව නිර්ජලීය කැල්සියම් ක්ලෝරයිඩ් මත ඩෙසිකේටරයක දින 2-3 ක් නියත බරට වියළන්න.

    සම්මත විසඳුම. සම්මත ද්‍රාවණයක් පිළියෙළ කිරීම සිදු කරනු ලබන්නේ ද්‍රාවණ දෙකක් මිශ්‍ර කිරීමෙනි: 1) බේරියම් ක්ලෝරයිඩ් 0.0962 n ද්‍රාවණය: ස්ඵටිකරූපී BaCl 2 ∙2H 2 O ග්‍රෑම් 1.175 ක් පරිමාමිතික නළයක ජලය මිලි ලීටර් 100 ක දියකරනු ලැබේ. 2) 0.2 N සල්ෆියුරික් අම්ල ද්‍රාවණය. ඊළඟට, බේරියම් සල්ෆේට් අත්හිටුවීමක් ලබා ගනී: බේරියම් ක්ලෝරයිඩ් 0.0962 N ද්‍රාවණයකින් මිලි ලීටර් 3 ක් මිලි ලීටර් 100 පරිමාමිතික නළයකට වත් කර + 10 ° C උෂ්ණත්වයකදී සල්ෆියුරික් අම්ලයේ 0.2 N ද්‍රාවණයකින් පරිමාව සකස් කරනු ලැබේ ( මෙම උෂ්ණත්වයේ දී, අවක්ෂේපිත බේරියම් සල්ෆේට් අංශු ප්‍රමාණය සාපේක්ෂව ස්ථායී ප්‍රතිඵලයක් ලබා දෙයි).

    උපස්ථර බෆර විසඳුම: පරීක්ෂණ නළයකට ජලය මිලි ලීටර් 10 ක් වත් කර L-glutamyl-p-nitroaniline ග්‍රෑම් 0.028 ක් සහ සෝඩියම් ක්ලෝරයිඩ් ග්‍රෑම් 0.082 ක් එකතු කර, කලවම් වීම නතර නොකර, පරීක්ෂණ නළයේ අන්තර්ගතය තත්පර 60 ක් උතුරන ජල ස්නානයක දිය කරන්න. . එවිට විසඳුම 37 ° C දක්වා සිසිල් වන අතර බෆර ද්රාවණ 2.5 ml එකතු කරනු ලැබේ. සකස් කරන ලද උපස්ථර ද්රාවණය ක්රියාත්මක වන විට 37 ° C දී ජල ස්නානයක ගබඩා කර ඇත. භාවිතයට නොගත් උපස්ථර විසඳුම සතියක් දක්වා ශීතකරණයක් තුළ ගබඩා කළ හැක. උපස්ථරය දුර්වල ලෙස ද්‍රාව්‍ය වන අතර කාමර උෂ්ණත්වයේ දී අවක්ෂේප වේ. එබැවින්, භාවිතයට පෙර, තාපාංක ජල ස්නානයක රත් කිරීමෙන් ස්ඵටිකීකරණය කරන ලද උපස්ථරය විසුරුවා හරිනු ලැබේ. උපස්ථරය උණුසුම් කිරීම සහ විසුරුවා හැරීම දෙවරක් නොඉක්මවිය හැක.

    ALT නිර්ණය කිරීම සඳහා උපස්ථර විසඳුම (විසඳුම අංක 1). 29.2 mg α-ketoglutaric අම්ලය සහ 1.78 g alanine (0.89 g α-alanine) සාම්පල විශ්ලේෂණාත්මක සමතුලිතතාවයකින් කිරා මැන බලන අතර අවක්ෂේපය සම්පූර්ණයෙන්ම විසුරුවා හරින තෙක් 1 M සෝඩියම් හයිඩ්‍රොක්සයිඩ් ද්‍රාවණයක දියකරනු ලැබේ (pH 7.4). ද්‍රාවණය මිලි ලීටර් 100 ක බෝතලයකට වත් කර පරිමාව 0.1 M ෆොස්ෆේට් බෆරය (pH 7.4) සමඟ සලකුණට ගැලපේ. ක්ලෝරෝෆෝම් 1 බිංදු එකතු කරන්න. විසඳුම ශීතකරණයක් තුළ ශීත කළ ගබඩා කර ඇත.

    AsAT නිර්ණය සඳහා උපස්ථර විසඳුම (විසඳුම අංක 2). 29.2 mg α-ketoglutaric අම්ලය සහ 2.66 g α-aspartic අම්ලය (α-aspartic අම්ලය 1.33 g) නියැදි විශ්ලේෂණාත්මක ශේෂයක් මත කිරා මැන බලයි. මීලඟට, විසඳුම අංක 1 ලෙස විසඳුම සකස් කර ඇත.

    ග්ලූකෝස් පොස්පේට් සමාවයවිකය නිර්ණය කිරීම සඳහා උපස්ථර විසඳුම. මෙඩිනල් ඇසිටේට් බෆර ද්‍රාවණය pH 7.4 සකස් කර ඇත (සෝඩියම් ඇසිටේට් ග්‍රෑම් 9.714 ක් සහ මෙඩිනල් ග්‍රෑම් 14.714 ක් ජලයේ දිය කර පරිමාව මිලි ලීටර් 500 දක්වා සකස් කර ඇත). ග්ලූකෝස්-6-පොස්පේට් ඩිසෝඩියම් ලුණු 0.03 M ද්‍රාවණයෙන් මිලි ලීටර් 8.33 ක් මැද ඇසිටේට් බෆරය මිලි ලීටර් 25 ක් සමඟ මිශ්‍ර කරන්න; 0.1 M හයිඩ්‍රොක්ලෝරික් අම්ල ද්‍රාවණයෙන් මිලි ලීටර් 25 ක් මිශ්‍රණයට එකතු කර ජලය මිලි ලීටර් 100 දක්වා තනුක කරන්න. සීතල තබා ගන්න.

    ලැක්ටේට් ඩිහයිඩ්‍රොජිනේස් නිර්ණය කිරීම සඳහා උපස්ථර ද්‍රාවණය. 1 M සෝඩියම් ලැක්ටේට් ද්‍රාවණය 1 ml, NaCl ද්‍රාවණය 9 M, 0.05 M Cl 2, 10 g/L NAD ද්‍රාවණය මිශ්‍ර කරන්න. 0.5 M ෆොස්ෆේට් බෆර ද්‍රාවණයේ මිලි ලීටර් 2.5 ක් (pH 7.4) සහ නයිට්‍රොටෙට්‍රසෝලියම් නිල් ද්‍රාවණය 1 g / l අන්තර්ගතයට එකතු වේ. භාවිතයට පෙර, 1 g / l සාන්ද්‍රණයක් සහිත phenanzine methasulfate ද්‍රාවණයක මිලි ලීටර් 0.25 ක් මිශ්‍රණයට එකතු කරනු ලැබේ.

    ෆෲක්ටෝස් බිස්පොස්පේට් ඇල්ඩොලේස් නිර්ණය කිරීම සඳහා උපස්ථර විසඳුම. ෆෲක්ටෝස් බිස්පොස්පේට් වල බේරියම් ලුණු මිලිග්‍රෑම් 270 ක් 1 M හයිඩ්‍රොක්ලෝරික් අම්ලයේ මිලි ලීටර් 3.5 ක් තුළ දිය වේ. 14% සෝඩියම් සල්ෆේට් ද්‍රාවණයෙන් මිලි ලීටර් 1 ක් එකතු කරන අතර සෑදෙන අවක්ෂේපය කේන්ද්‍රාපසාරී මගින් ඉවත් කරනු ලැබේ. සෝඩියම් සල්ෆේට් 1 බිංදුවක් සුපිරියට එකතු කරන්න. කැළඹිලි පෙනුමෙන් පෙන්නුම් කරන්නේ බේරියම් අයන ප්‍රමාණවත් ලෙස සම්පූර්ණ නොවීමකි. මෙම අවස්ථාවේ දී, සෝඩියම් සල්ෆේට් වැඩිපුර එකතු කර නැවත කේන්ද්රාපසාරී වේ. කේන්ද්රාපසාරී 3% සෝඩියම් හයිඩ්රොක්සයිඩ් ද්රාවණයකින් pH 7.4-7.6 දක්වා සකස් කර, මිලි ලීටර් 25 ක නළයකට මාරු කර පරිමාව සලකුණට සකස් කර ඇත. ප්රතිඵලයක් වශයෙන් ද්රාවණය හයිඩ්රසීන් ක්ලෝරයිඩ් 0.56 M ද්රාවණයකින් මිලි ලීටර් 25 ක්, මොනොයිඩොඇසිටික් අම්ලය 0.002 M ද්රාවණයකින් මිලි ලීටර් 25 ක්, 0.5% සෝඩියම් කාබනේට් ද්රාවණයක මිලි ලීටර් 100 ක් සහ ආස්රැත ජලය මිලි ලීටර් 25 ක් සමඟ මිශ්ර වේ. ශීතකරණය තුළ ගබඩා කර ඇත.

    තයිමෝල්-වෙරෝනල් බෆරය. මිලි ලීටර් 100 පරිමාමිතික නළයක, බෆර් ද්‍රාවණයක් මිලි ලීටර් 80 ක් සහ තයිමෝල් 10% ඇල්කොහොල් ද්‍රාවණයකින් මිලි ලීටර් 1 ක් මිශ්‍ර කර සොලවා බෆර ද්‍රාවණය ලකුණට එක් කරන්න. pH අගය 7.55 විය යුතුය.

    o-ටොලුයිඩින් ප්‍රතික්‍රියාකාරකය. තයෝරියා ග්‍රෑම් 0.15 ක් ග්ලැසියර ඇසිටික් අම්ලය මිලි ලීටර් 94 ක් තුළ දිය කර ආසවනය කළ ඕ-ටොලුයිඩින් මිලි ලීටර් 6 ක් සමඟ මිශ්‍ර කර ඇත. අඳුරු බෝතලයක ගබඩා කර ඇත.

    Phenol ජලය සමග සංතෘප්ත. ආසවනය කළ ෆීනෝල් ​​ග්‍රෑම් 100 කට ජලය මිලි ලීටර් 35 ක් එකතු කර කලවම් කර ෆීනෝල් ​​ද්‍රාවණය වේගවත් කිරීම සඳහා මිශ්‍රණය තරමක් රත් කරයි.

    Phenolphthalene, වැඩ කරන විසඳුම. 0.1 N සෝඩියම් හයිඩ්‍රොක්සයිඩ් ද්‍රාවණයේ මිලි ලීටර් 15 ක ද්‍රව්‍ය 75 mg විසුරුවා හැරීමෙන් පිළියෙළ කරන්න, ද්‍රාවණය අවර්ණ හෝ තරමක් රෝස විය යුතුය, වර්ණ විසඳුම් වැඩ සඳහා සුදුසු නොවේ. ප්‍රතික්‍රියාකාරකයේ ප්‍රතිරෝධය වැඩි කිරීම සඳහා ට්‍රයිලෝන් මිලිග්‍රෑම් 3 ක් එයට එකතු කරන අතර එය බැර ලෝහවල ලවණ බන්ධනය කිරීමෙන් වායුගෝලීය ඔක්සිජන් මගින් ෆීනොල්ෆ්තලීන් ස්වයංක්‍රීයකරණය වීම වළක්වයි.

    ෆයිබ්රින්. Bovine blood fibrin සුදු කැටියක් ලබා ගන්නා තෙක් දින කිහිපයක් ගලා යන ජලයේ රුධිර වර්ණක වලින් සෝදා හරිනු ලැබේ. ජලය මිරිකා, ග්ලිසරින් පුරවා ඇති ෆයිබ්‍රින් තදින් වසා ඇති භාජනයක ගබඩා කර ඇත. භාවිතයට පෙර, ෆයිබ්රින් ග්ලිසරින් වලින් සෝදා ඇත.

    පොස්පරස්-වැනිලින් ප්රතික්රියාකාරකය. සාන්ද්‍ර පොස්පරික් අම්ලයේ කොටස් 4 ක් (පරිමාව අනුව) වැනිලින් 0.6% ජලීය ද්‍රාවණයකින් 1 කොටස සමඟ මිශ්‍ර කර ඇත. ප්‍රතික්‍රියාකාරකය කාමර උෂ්ණත්වයේ අඳුරු වීදුරු භාජනයක ගබඩා කර ඇත.

    ෆෲක්ටෝස් 1,6-බිස්පොස්පේට්, සෝඩියම් ලුණු. ෆෲක්ටෝස්-1,6-බිස්පොස්පේට් සෝඩියම් ලුණු 10% ක ද්‍රාවණයකින් මිලි ලීටර් 2.0 ක් මිලි ලීටර් 25 ක භාජනයක ජලය සමග තනුක කර ඇත. ශීතකරණය තුළ ගබඩා කරන විට ස්ථාවර වේ.

    යූරියා සඳහා වර්ණ ප්රතික්රියාකාරකය. ඩයසිටයිල් මොනොක්සයිම් සහ තයෝසෙමිකාර්බසයිඩ් අඩංගු යූරියා නිර්ණය කිරීම සඳහා කට්ටලයේ ටැබ්ලට් එක මිලි ලීටර් 50 ක නළයක රත් කිරීමෙන් විසුරුවා හරිනු ලැබේ. විසඳුම සති තුනක් සඳහා ස්ථායී වේ. භාවිතයට පෙර, සකස් කළ ද්‍රාවණයේ සමාන පරිමාවක් සහ 9.6% සල්ෆියුරික් අම්ල ද්‍රාවණයක් මිශ්‍ර කරන්න.

    β-glycerophosphate හි ක්ෂාරීය ද්‍රාවණය. මිලි ලීටර් 100 ක ධාරිතාවක් සහිත පරිමාමිතික නළයක සෝඩියම් β-ග්ලිසරොපොස්පේට් ග්රෑම් 1 ක් සහ මෙඩිනල් ග්රෑම් 0.85 ක් එකතු කරන්න, ආස්රැත ජලය මිලි ලීටර් 30 ක් පමණ එකතු කරන්න, විසුරුවා හැර ජලය සමඟ පරිමාව ගෙන එන්න. මිලි ලීටර් 100 ක ධාරිතාවක් සහිත තවත් පරිමාමිතික නළයක β-ග්ලිසරොපොස්පේට් සකස් කළ ද්‍රාවණයෙන් මිලි ලීටර් 50 ක්, සෝඩියම් හයිඩ්‍රොක්සයිඩ් 0.1 M ද්‍රාවණයෙන් මිලි ලීටර් 2.8 ක් එකතු කර ආස්රැත ජලය (ද්‍රාවණය pH 8.6) සමඟ ලකුණු කරන්න. ටොලුයින් මිලි ලීටර් 3 ක් පමණ දියර මත තබන්න. විසඳුම දින 10 කට නොඅඩු ශීතකරණයක් තුළ ගබඩා කරන්න.

  • රුධිරය ගැනීම, "සිහින් ආලේපයක්" සහ "ඝන බිංදුවක්" සකස් කිරීම
  • බැක්ටීරියා චලනය. ධජයේ ව්යුහය, ඝණකම, දිග, රසායනික සංයුතිය. ක්ෂුද්ර ජීවීන්ගේ ජීව සෛලවල ස්ථාවර සූදානම සහ සූදානම සකස් කිරීම.
  • බෆර් විසඳුම් සකස් කිරීම සඳහා රසායනිකව පිරිසිදු ප්රතික්රියාකාරක භාවිතා වේ. සහ විශ්ලේෂණාත්මක ශ්රේණිය, විශේෂයෙන් සකස් කර ඇත. ප්රතික්රියාකාරක පහත පරිදි සකස් කර ඇත.

    පොටෑසියම් පොස්පේට් මොනොප්‍රතිස්ථාපන, KH 2 PO 4 , අණුක බර 136.09. ඖෂධයේ ග්රෑම් 100 ක් ජලය මිලි ලීටර් 150 ක උනුට රත් කළ විට විසුරුවා හරිනු ලැබේ. විසඳුම උණුසුම්ව පෙරීම සිදු කරයි. නිරන්තර ඇවිස්සීමත් සමඟ, පෙරීම 10 to C දක්වා සිසිල් කරනු ලැබේ. ඉන්පසු එතිල් මධ්යසාර මිලි ලීටර් 150 ක් එකතු කරන්න. ෆිල්ටරේට් නිරන්තරයෙන් ඇවිස්සීමත් සමඟ වෙන් කරන ලද ස්ඵටික චූෂණ පුනීලයක් මත පෙරා ඉවත් කර නැවත එම කොන්දේසි යටතේ නැවත ස්ඵටික වේ; ස්ඵටික 105 ... 110 ºС හි නියත බරට වියලනු ලැබේ. 99.9 ... 100.0% පරාසයක ඇති ප්‍රධාන ද්‍රව්‍යයේ අන්තර්ගතය සහිත සූදානමක් ඇති විට, ද්‍රව්‍යයේ මූලික සූදානම සිදු නොකෙරේ.

    විසර්ජන සෝඩියම් පොස්පේට්, Na 2 HPO 4 12H 2 O, අණුක බර 358.12. ඖෂධය සකස් කිරීමට ක්රම දෙකක් තිබේ.

    a) ඖෂධයේ ග්රෑම් 150 ක් 100 0 C දක්වා රත් කළ විට ජලය මිලි ලීටර් 150 ක් තුළ විසුරුවා හරිනු ලැබේ. විසඳුම උණුසුම්ව පෙරීම සහ සිසිලනයෙන් පසුව, අවක්ෂේපිත ස්ඵටික පෙරීම සිදු කරයි. 100ºС දක්වා රත් කිරීමෙන් නැවත ස්ඵටිකීකරණය නැවත නැවතත් සිදු කෙරේ. පිළියෙළ කිරීම සම්පූර්ණයෙන්ම වියළී යන තෙක් අඛණ්ඩව ඇවිස්සීමත් සමඟ ජල ස්නානයක පෝසිලේන් කෝප්පයක නැවත ස්ඵටිකීකරණය කරන ලද සූදානම රත් කරනු ලැබේ. ප්රතිඵලයක් වශයෙන් ලුණු දිවා කාලයේදී විලයනය කරන ලද කැල්සියම් ක්ලෝරයිඩ් මත ඩෙසිකේටරයක වියලනු ලැබේ. නැවත ස්ඵටිකීකරණය කරන ලද සූදානම (Na 2 HPO 4 · 2H 2 O), ප්රධාන ද්රව්යයේ අන්තර්ගතය පරීක්ෂා කරනු ලැබේ. මෙය සිදු කිරීම සඳහා, ඖෂධයේ ග්රෑම් 0.5000 ක් පමණ ජලය මිලි ලීටර් 50 ක් තුළ විසුරුවා හරිනු ලැබේ, සංතෘප්ත සෝඩියම් ක්ලෝරයිඩ් ද්රාවණයක මිලි ලීටර් 2 ... 3 ක් එකතු කර මෙතිල් රතු දර්ශකයක් ඉදිරිපිට 0.1 N හයිඩ්රොක්ලෝරික් අම්ල ද්රාවණයකින් ටයිටේට් කර ඇත. . අවශ්ය නම්, සාම්පලයේ ප්රමාණයට ගැලපීම් කරන්න. හරියටම 0.1 N හයිඩ්‍රොක්ලෝරික් අම්ලයේ මිලි ලීටර් 1 ක් Na 2 HPO 4 2H 2 O ග්‍රෑම් 0.0178 ට අනුරූප වේ.

    b) ඖෂධයේ ග්රෑම් 75 ක් 60 ºС දක්වා රත් කරන ලද ජලය මිලි ලීටර් 250 ක් තුළ විසුරුවා හරිනු ලැබේ. විසඳුම උණුසුම්ව පෙරීම, ෆිල්ට්රේට් 10 ºС දක්වා නිරන්තරයෙන් ඇවිස්සීමත් සමඟ සිසිල් කරනු ලැබේ. අවක්ෂේපිත ස්ඵටික චූෂණ පුනීලයක් මත පෙරා ඉවත් කර නැවත එම තත්ත්‍වයන් යටතේ නැවත ස්ඵටික වේ. ප්‍රතිඵලයක් ලෙස ලැබෙන ලුණු ප්‍රථමයෙන් 30ºC නොඉක්මවන උෂ්ණත්වයකදී පැය 24 ක් වියළනු ලැබේ, පසුව එය 50 ºС උෂ්ණත්වයකදී පැය 3-4 අතර කාලයක් උඳුන තුල වියළනු ලැබේ, අවසානයේ 120±5 ºС නියත බරට ලුණු දැමීම වළක්වයි. දියවීම. වියළීමකින් පසු ලුණු Na 2 HPO 4 සංයුතිය ඇත.

    ප්‍රතික්‍රියාකාරක සකස් කිරීමෙන් පසු, පොටෑසියම් පොස්පේට් මොනොප්‍රතිස්ථාපන සහ සෝඩියම් පොස්පේට් ප්‍රතිස්ථාපනය කළ ද්‍රාවණ සකස් කරනු ලැබේ.

    ග්‍රෑම් 9.078 බරැති නිර්ජලීය පොටෑසියම් පොස්පේට් මොනොප්‍රතිස්ථාපන KH 2 PO 4 කොටසක් ජලයේ දිය කර ද්‍රාවණයේ පරිමාව ලීටර් 1 දක්වා සකස් කර ඇත. විසඳුම ස්ථාවර කිරීම සඳහා ටොලුයින් 3-4 බිංදු එකතු කරන්න.

    ග්රෑම් 11.876 ක බරින් යුත් Na 2 HPO 4 12H 2 O විසර්ජනය කරන ලද සෝඩියම් පොස්පේට් කොටසක් ජලයේ දිය වී ඇති අතර විසඳුමේ පරිමාව ලීටර් 1 දක්වා සකස් කර ඇත. විසඳුම ස්ථාවර කිරීම සඳහා ටොලුයින් 3-4 බිංදු එකතු කරන්න.

    මූලික විසඳුම් වලින් A.2 වගුවට අනුව pH අගය 4.94 සිට 9.18 දක්වා පොස්පේට් බෆර විසඳුම් සකස් කරන්න.

    වගුව A.2 - pH අගය 4.94 ... 9.18 සමඟ පොස්පේට් බෆර ද්‍රාවණය

    pH අගය Na 2 HPO 4 12H 2 O ද්‍රාවණය, මිලි KH 2 PO 4 විසඳුම, මිලි
    4,94 1,0 99,0
    5,29 2,5 97,5
    5,59 5,0 95,0
    5,91 10,0 90,0
    6,24 20,0 80,0
    6,47 30,0 70,0
    6,64 40,0 60,0
    6,81 50,0 50,0
    6,98 60,0 40,0
    7,17 70,0 30,0
    7,38 80,0 20,0
    7,73 90,0 10,0
    8,04 95,0 5,0
    8,34 97,5 2,5
    8,67 99,0 1,0
    9,18 100,0 0,0

    එකතු කළ දිනය: 2015-08-06 | බැලීම්: 4058 |

    ස්වාරක්ෂක විසඳුම්වල pH අගය Henderson-Hasselbach සමීකරණයට අනුව ගණනය කෙරේ:

    - අම්ල බෆරයක් සඳහා, සමීකරණයට ආකෘතිය ඇත

    - ප්රධාන බෆරය සඳහා

    සමීකරණ මගින් පෙන්නුම් කරන්නේ දී ඇති සංයුතියක බෆර ද්‍රාවණයක pH අගය අම්ලය සහ ලුණු හෝ භෂ්ම සහ ලුණු සාන්ද්‍රණයේ අනුපාතය අනුව තීරණය වන අතර එබැවින් තනුක කිරීම මත රඳා නොපවතී. විසඳුමේ පරිමාව වෙනස් වන විට, එක් එක් සංරචකයේ සාන්ද්රණය එකම වාර ගණනකින් වෙනස් වේ.

    බෆර් ධාරිතාව

    ස්ථාවර pH අගයක් පවත්වා ගැනීමට බෆර විසඳුම් වල හැකියාව සීමිතය. එම. බෆර් ද්‍රාවණයේ pH අගය සැලකිය යුතු ලෙස වෙනස් නොකර අම්ලය හෝ ක්ෂාර එකතු කිරීම කළ හැක්කේ සීමිත ප්‍රමාණවලින් පමණි.

    අම්ල සහ ක්ෂාර එකතු කළ විට මාධ්‍යයේ ප්‍රතික්‍රියාවේ මාරුවට ප්‍රතිරෝධය දැක්වීමට බෆර ද්‍රාවණයක ඇති හැකියාව සංලක්ෂිත අගය ද්‍රාවණයේ බෆර ධාරිතාව (B) ලෙස හැඳින්වේ.

    ස්වාරක්ෂක ධාරිතාව මනිනු ලබන්නේ ප්‍රබල අම්ලයක හෝ භෂ්මයක මවුල සමාන සංඛ්‍යාවෙන් වන අතර, බෆර ද්‍රාවණයක ලීටර් 1 කට එකතු කිරීමෙන් pH අගය එකකින් වෙනස් වේ.

    ගණිතමය වශයෙන්, බෆර ධාරිතාව පහත පරිදි අර්ථ දැක්වේ:

    B අම්ලය (mol/l හෝ mmol/l):

    ,

    මෙහි n(1/z HA) යනු අම්ලයේ මවුලයට සමාන සංඛ්‍යාව, pH 0 සහ pH යනු අම්ලය එකතු කිරීමට පෙර සහ පසුව බෆර ද්‍රාවණයේ pH අගය වන අතර V B යනු බෆර ද්‍රාවණයේ පරිමාවයි.

    ක්ෂාර තුළ (mol / l හෝ mmol / l):

    ,

    මෙහි n (1/z VOH) යනු ක්ෂාර වලට සමාන මවුල ගණන වන අතර, ඉතිරි තනතුරු සමාන වේ.

    බෆර ධාරිතාව සාධක ගණනාවක් මත රඳා පවතී:

    1. බෆර් ද්‍රාවණයේ එකතු කරන ලද ද්‍රව්‍ය සහ සංරචකවල ස්වභාවය අනුව. නිසා සමහර ද්‍රව්‍යවලට ද්‍රාව්‍ය නොවන සංයෝග හෝ සංකීර්ණ සෑදිය හැකිය, නැතහොත් බෆර පද්ධතියේ සංරචක සමඟ වෙනත් අනවශ්‍ය ප්‍රතික්‍රියා ලබා දිය හැකිය, එවිට බෆර ධාරිතාව පිළිබඳ සංකල්පය එහි අර්ථය නැති කර ගනී.

    2. බෆර පද්ධතියේ සංරචකවල ආරම්භක සාන්ද්රණයෙන්.

    ද්‍රාවණයේ ඇති අම්ල-පාදක යුගලයේ සංරචක ගණන වැඩි වන තරමට මෙම ද්‍රාවණයේ ස්වාරක්ෂක ධාරිතාව වැඩි වේ.

    පද්ධතිය තවමත් එහි ගුණාංග රඳවා තබා ගන්නා බෆර් ද්‍රාවණයේ සංරචකවල සාන්ද්‍රණයේ අනුපාතයේ සීමාව. pH පරතරය = pK ± 1 පද්ධතියේ බෆර ක්‍රියාකාරී කලාපය ලෙස හැඳින්වේ. මෙය 1/10 සිට 10/1 දක්වා ලුණු /C සමඟ අනුපාතය පරාසයට අනුරූප වේ.

    B සිට (රුධිරය) \u003d 0.05 mol / l; B සිට (ප්ලාස්මා) \u003d 0.03 mol / l; B සිට (serum blood) = 0.025 mol / l

    රුධිර ආරක්ෂණ පද්ධති

    ජීවීන්ගේ අම්ල-පාදක සමතුලිතතාවය පවත්වා ගැනීම සඳහා බෆර් පද්ධති විශේෂයෙන් වැදගත් වේ. බොහෝ අන්තර් සෛලීය තරලවල pH අගය 6.8 සිට 7.8 දක්වා පරාසයක පවතී.

    අම්ලය - මිනිස් රුධිරයේ මූලික සමතුලිතතාවය හයිඩ්‍රොකාබනේට්, පොස්පේට්, ප්‍රෝටීන් සහ හීමොග්ලොබින් බෆර පද්ධති මගින් සපයයි. රුධිර ප්ලාස්මාවේ සාමාන්‍ය pH අගය 7.40 ± 0.05 වේ.

    හීමොග්ලොබින් බෆර පද්ධතිය රුධිරයේ 35% බෆර් ධාරිතාව සපයයි: . ඔක්සිහෙමොග්ලොබින් යනු අඩු හිමොග්ලොබින් වලට වඩා ප්‍රබල අම්ලයකි. Oxyhemoglobin සාමාන්යයෙන් පොටෑසියම් ලුණු ආකාරයෙන් පවතී.

    කාබනේට් බෆර පද්ධතිය : බලය අතින් පළමු තැන ගනී. එය 1/20 අනුපාතයකින් කාබන් අම්ලය (H 2 CO 3) සහ සෝඩියම් හෝ පොටෑසියම් බයිකාබනේට් (NaHCO 3, KHCO 3) මගින් නිරූපණය කෙරේ. බයිකාබනේට් බෆරය ශරීරයේ අම්ල-පාදක කැළඹීම් නිවැරදි කිරීම සඳහා බහුලව භාවිතා වේ.

    පොස්පේට් බෆර පද්ධතිය . ඩයිහයිඩ්රොෆොස්පේට් දුර්වල අම්ලයක ගුණ ඇති අතර රුධිරයට ඇතුල් වන ක්ෂාරීය නිෂ්පාදන සමඟ අන්තර් ක්රියා කරයි. හයිඩ්‍රොපොස්පේට් දුර්වල ක්ෂාර ගුණ ඇති අතර ප්‍රබල අම්ල සමඟ ප්‍රතික්‍රියා කරයි.

    ප්‍රෝටීන් බෆර පද්ධතිය එහි ඇම්ෆොටරික් ගුණාංග නිසා අම්ල සහ ක්ෂාර උදාසීන කිරීමේ කාර්යභාරය ඉටු කරයි: ආම්ලික පරිසරයක, ප්ලාස්මා ප්‍රෝටීන භෂ්ම ලෙස හැසිරේ, මූලික එකක් තුළ - අම්ල වැනි:

    පටකවල pH අගය සාපේක්ෂ ස්ථාවර මට්ටමක පවත්වා ගැනීමට දායක වන පටක වල බෆර් පද්ධති ද පවතී. ප්‍රධාන පටක බෆර වන්නේ ප්‍රෝටීන සහ පොස්පේට් ය. pH අගය පවත්වා ගැනීම පෙනහළු සහ වකුගඩු ආධාරයෙන් ද සිදු කෙරේ. පෙනහළු හරහා අතිරික්ත කාබන්ඩයොක්සයිඩ් ඉවත් කරනු ලැබේ. ඇසිඩෝසිස් සහිත වකුගඩු වැඩි අම්ල මොනොබැසික් සෝඩියම් පොස්පේට් ස්‍රාවය කරයි, සහ ඇල්කලෝසිස් සමඟ - වැඩි ක්ෂාරීය ලවණ: ඩයිබාසික් සෝඩියම් පොස්පේට් සහ සෝඩියම් බයිකාබනේට්.

    ගැටළු විසඳීමේ උදාහරණ

    විසඳුමක්:

    අපි සූත්‍රය භාවිතා කරමින් අම්ල බෆර ද්‍රාවණයේ pH අගය ගණනය කරමු

    පිළිතුර: 5,76

    විසඳුමක්:

    සූත්‍රය භාවිතයෙන් අපි බෆර ධාරිතාව ගණනය කරමු:

    පිළිතුර: 0.021 mol/l

    උදාහරණය 3

    බෆර ද්‍රාවණය 100 ml 0.1 mol/l ඇසිටික් අම්ලය සහ 200 ml 0.2 mol/l සෝඩියම් ඇසිටේට් වලින් සමන්විත වේ. මෙම ද්‍රාවණයට 0.2 mol/l සෝඩියම් හයිඩ්‍රොක්සයිඩ් ද්‍රාවණය මිලිලීටර් 30ක් එකතු කළහොත් එහි pH අගය වෙනස් වන්නේ කෙසේද?

    විසඳුමක්:

    සූත්‍රය භාවිතයෙන් අපි බෆර ද්‍රාවණයේ pH අගය ගණනය කරමු:

    බෆර් ද්‍රාවණයට NaOH එකතු කළ විට, ලුණු ප්‍රමාණය වැඩි වන අතර බෆර ද්‍රාවණයේ ඇති අම්ල ප්‍රමාණය අඩු වේ:

    0,006 0,006 0,006

    CH 3 COOH + NaOH \u003d CH 3 COONa + H 2 O

    අපි n (NaOH) \u003d 0.03 l 0.2 mol / l \u003d 0.006 mol ගණනය කරන්නෙමු, එබැවින්, බෆර ද්‍රාවණය තුළ අම්ල ප්‍රමාණය 0.006 mol කින් අඩු වන අතර ලුණු ප්‍රමාණය 0.006 mol කින් වැඩි වේ.

    අපි සූත්‍රය භාවිතයෙන් විසඳුමේ pH අගය ගණනය කරමු:

    එබැවින්: pH 2 - pH 1 = 5.82 - 5.3 = 0.52

    පිළිතුර: buffer pH වෙනස් = 0.52.

    ස්වාධීන විසඳුමක් සඳහා කාර්යයන්

    4. ආරම්භක අගය (7.36) සිට අවසාන අගය (7.0) දක්වා pH අගය වෙනස් කිරීම සඳහා රුධිරයේ මිලි ලීටර් 2 ක් ටයිට්රේට් කිරීම සඳහා, 0.01 M HCl ද්රාවණයෙන් මිලි ලීටර් 1.6 ක් එකතු කිරීම අවශ්ය විය. අම්ල බෆර ධාරිතාව ගණනය කරන්න.

    5. හයිඩ්‍රජන් අයන සාන්ද්‍රණය 300 ගුණයකින් අඩු කිරීම සඳහා ඇසිටික් අම්ලය මිලි ලීටර් 300 කට සෝඩියම් ඇසිටේට් මවුල කීයක් එකතු කළ යුතුද (K dis (CH 3 coon) = 1.85.10 -5).

    6. ජෛව රසායනික අධ්යයනවලදී, pH = 7.4 සහිත පොස්පේට් බෆරයක් භාවිතා වේ. එවැනි බෆර විසඳුමක් (pK (H 2 PO 4 -) \u003d 7.4) ලබා ගැනීම සඳහා සෝඩියම් හයිඩ්‍රජන් පොස්පේට් සහ සෝඩියම් ඩයිහයිඩ්‍රජන් පොස්පේට් ද්‍රාවණ 0.1 mol / l සාන්ද්‍රණයක් සමඟ මිශ්‍ර කළ යුත්තේ කුමන අනුපාතයටද?

    7. පහත දැක්වෙන දර්ශක සමඟ CBS හි කුමන උල්ලංඝනයන් නිරීක්ෂණය කරනු ලැබේ: රුධිර pH = 7.20, Pco 2 = 38 mm Hg. කලාව., BO = 30 mmol / l, SBO = -4 mmol / l. KOS හි මෙම උල්ලංඝනය ඉවත් කරන්නේ කෙසේද?

    පරීක්ෂණ කාර්යයන්

    ප්‍රතිශක්තිකරණ රසායන විද්‍යාව සඳහා Tween-20 Phosphate Wash Buffer යනු සාන්ද්‍රණයක් (20x) වන අතර එය තනුක කිරීමෙන් පසු ප්‍රතික්‍රියාකාරකවල විනිවිදක සේදීමට සහ ක්‍රියා පටිපාටි අතර ප්‍රතිශක්ති රසායන විද්‍යා නිදර්ශක කෙටි කාලීන ගබඩා කිරීමට භාවිතා කරයි. තනුක කිරීමෙන් පසු, භාවිතයට සූදානම් 0.01 M ද්‍රාවණයක pH අගය 7.4±0.1 වේ. මෙම පොස්පේට්-බෆරඩ් සේලයින් භාවිතය උසස් තත්ත්වයේ සේදීම පමණක් නොව, ප්රතිශක්තිකරණ ප්රතික්රියාව සඳහා අවශ්ය විශේෂිත බන්ධනය සඳහා පහසුකම් සපයන ප්රතිදේහ සහ ඒවායේ එපිටොප් වල රූප විද්යාත්මක ලක්ෂණ ආරක්ෂා කිරීමට ඉඩ සලසයි. PBS වෙත Tween-20 එකතු කිරීම වඩාත් කාර්යක්ෂම සේදීම ප්‍රවර්ධනය කරන අතර විශේෂිත නොවන පැල්ලම් වළක්වයි.

    අපගේ වාසි:

    මේ මොහොතේ අපි රසායනාගාර ප්‍රතික්‍රියාකාරක ප්‍රමුඛ විදේශීය නිෂ්පාදකයින් සමඟ සහයෝගයෙන් කටයුතු කරන්නෙමු. අපගේ සේවාදායකයින් මොස්කව් සහ රුසියාවේ අනෙකුත් නගරවල වෛද්ය සංවිධාන ඇතුළුව රාජ්ය නොවන සහ රාජ්ය ආයතන වේ. නිත්‍ය පාරිභෝගිකයින් සඳහා වට්ටම් පද්ධතියක් ඇත.



    සමාන ලිපි